| 摘要 | 第9-11页 |
| Abstract | 第11-12页 |
| 前言 | 第13-31页 |
| 1 深海热液口概况 | 第13-18页 |
| 1.1 深海热液口的发现 | 第13页 |
| 1.2 深海热液口的环境 | 第13-14页 |
| 1.3 深海热液口生态系统概况 | 第14-15页 |
| 1.4 深海热液口优势物种-盲虾 | 第15-18页 |
| 2 转录组研究概况 | 第18-23页 |
| 2.1 转录组概念 | 第18-19页 |
| 2.2 转录组测序技术 | 第19-21页 |
| 2.3 转录组的研究进展 | 第21-22页 |
| 2.4 转录组在生物研究中的应用 | 第22-23页 |
| 3 超氧化物歧化酶概况 | 第23-29页 |
| 3.1 超氧化物歧化酶分类 | 第24页 |
| 3.2 超氧化物歧化酶的结构 | 第24-26页 |
| 3.3 超氧化物歧化酶对生命体的意义 | 第26-27页 |
| 3.4 超氧化物歧化酶的研究近况 | 第27-28页 |
| 3.5 超氧化物歧化酶的应用 | 第28-29页 |
| 4 本论文的研究目的及意义 | 第29-31页 |
| 第一章 盲虾R. exoculata的转录组测序与初步分析 | 第31-56页 |
| 1 引言 | 第31页 |
| 2 材料与方法 | 第31-39页 |
| 2.1 实验材料 | 第31-32页 |
| 2.2 实验方法 | 第32-39页 |
| 3 结果与分析 | 第39-54页 |
| 3.1 盲虾R. exoculata RNA的种属鉴定 | 第39-41页 |
| 3.2 盲虾R. exoculata转录组测序以及质量分析 | 第41-44页 |
| 3.3 Unigene的功能注释 | 第44-47页 |
| 3.4 Unigenes的代谢通路分析 | 第47-54页 |
| 4 小结与讨论 | 第54-55页 |
| 5 展望 | 第55-56页 |
| 第二章 盲虾超氧化物歧化酶的克隆表达 | 第56-77页 |
| 1 引言 | 第56-57页 |
| 2 材料与方法 | 第57-65页 |
| 2.1 实验材料 | 第57页 |
| 2.2 实验试剂 | 第57-60页 |
| 2.3 实验方法 | 第60-65页 |
| 3 实验结果与讨论 | 第65-75页 |
| 3.1 RESOD的序列比对 | 第65-66页 |
| 3.2 RESOD三维结构预测 | 第66页 |
| 3.3 pET-HIS-RESOD重组质粒的表达 | 第66-67页 |
| 3.4 RESOD的蛋白纯化 | 第67-68页 |
| 3.5 RESOD的蛋白复性 | 第68页 |
| 3.6 RESOD的活性验证 | 第68-70页 |
| 3.7 RESOD温度与酶活变化关系 | 第70-71页 |
| 3.8 RESOD的温度稳定性 | 第71-72页 |
| 3.9 RESOD的时间稳定性 | 第72-73页 |
| 3.10 RESOD的活性与p H变化关系 | 第73页 |
| 3.11 RESOD的pH稳定性 | 第73-74页 |
| 3.12 金属离子对SOD活性的影响 | 第74-75页 |
| 4 小结与讨论 | 第75-76页 |
| 5 展望 | 第76-77页 |
| 参考文献 | 第77-94页 |
| 附录A 常用试剂、培养基、常规实验方法及主要仪器设备 | 第94-102页 |
| 致谢 | 第102页 |
