| 中文摘要 | 第4-5页 |
| Abstract | 第5页 |
| 1 引言 | 第8-20页 |
| 1.1 叶绿体基因组的结构和表达调控 | 第8-13页 |
| 1.1.1 叶绿体基因组结构 | 第8-9页 |
| 1.1.2 叶绿体基因的转录 | 第9-11页 |
| 1.1.3 叶绿体基因的转录后加工 | 第11-13页 |
| 1.2 PPR蛋白家族 | 第13-16页 |
| 1.2.1 PPR蛋白的结构特点与分类 | 第14-15页 |
| 1.2.2 PPR蛋白的功能 | 第15-16页 |
| 1.3 PDM1 的研究进展 | 第16-18页 |
| 1.3.1 PDM1 参与到rpoA的剪切 | 第16-17页 |
| 1.3.2 PDM1 参与到大多数叶绿体RNA转录本的编辑 | 第17页 |
| 1.3.3 PDM1 可能影响到叶绿体内含子的剪接 | 第17-18页 |
| 1.3.4 PDM1 影响叶绿体质体核糖体的功能 | 第18页 |
| 1.4 本研究的目的和意义 | 第18-20页 |
| 2 材料与方法 | 第20-43页 |
| 2.1 材料 | 第20-26页 |
| 2.1.1 植物材料 | 第20页 |
| 2.1.2 实验仪器 | 第20-21页 |
| 2.1.3 使用到的质粒和菌株 | 第21页 |
| 2.1.4 抗生素 | 第21-22页 |
| 2.1.5 其他 | 第22-23页 |
| 2.1.6 实验中所用到的引物的序列 | 第23-26页 |
| 2.2 方法 | 第26-43页 |
| 2.2.1 拟南芥的种植 | 第26页 |
| 2.2.2 拟南芥DNA的提取和材料的鉴定 | 第26-27页 |
| 2.2.3 PCR反应体系 | 第27-28页 |
| 2.2.4 载体的构建 | 第28-30页 |
| 2.2.5 质粒转化农杆菌及鉴定 | 第30页 |
| 2.2.6 拟南芥的转化及抗性植株的筛选 | 第30-31页 |
| 2.2.7 酵母双杂交 | 第31-32页 |
| 2.2.8 酵母筛库 | 第32-33页 |
| 2.2.9 拟南芥叶片RNA的抽提、纯化、反转录 | 第33-34页 |
| 2.2.10 RT-PCR和qRT-PCR | 第34页 |
| 2.2.11 叶片蛋白的提取和Western blot | 第34-35页 |
| 2.2.12 Northern blot | 第35-38页 |
| 2.2.13 CO-IP技术 | 第38-39页 |
| 2.2.14 RNA免疫共沉淀 | 第39-43页 |
| 3 结果 | 第43-52页 |
| 3.1 与PDM1 相互作用的蛋白质的筛选 | 第43-45页 |
| 3.2 HA互补植株的筛选 | 第45-46页 |
| 3.3 PDM1 参与的编辑体能结合accD转录本 | 第46-47页 |
| 3.4 PDM1 在酵母体内能与MORFs相互作用参与到RNA的编辑过程 | 第47-48页 |
| 3.5 pdm1 突变体呈现RNA内含子剪接异常 | 第48-49页 |
| 3.6 PDM1 所在的剪接复合物能结合trnK和ndhA转录本 | 第49-50页 |
| 3.7 pdm1 突变体内ROS积累增加 | 第50-52页 |
| 4 讨论 | 第52-55页 |
| 4.1 PDM1 在RNA编辑中起着一个通用结合因子的作用 | 第52页 |
| 4.2 PDM1 参与到多种RNA加工的过程 | 第52-53页 |
| 4.3 PDM1 的功能可能会受到ROS调控 | 第53-55页 |
| 参考文献 | 第55-58页 |
| 攻读学位期间取得的研究成果 | 第58-59页 |
| 致谢 | 第59页 |
