| 中文摘要 | 第4-7页 |
| Abstract | 第7-10页 |
| 缩略语/符号说明 | 第13-15页 |
| 前言 | 第15-22页 |
| 研究现状、成果 | 第15-21页 |
| 研究目的、方法 | 第21-22页 |
| 对象和方法 | 第22-40页 |
| 1 实验对象 | 第22页 |
| 2 实验试剂 | 第22-26页 |
| 3 实验仪器和设备 | 第26-28页 |
| 4 方法 | 第28-40页 |
| 4.1 构建STZ诱导的1型糖尿病动物模型 | 第28页 |
| 4.2 超声心动图监测 | 第28页 |
| 4.3 大鼠心肌标本取材 | 第28页 |
| 4.4 石蜡组织切片制备 | 第28-29页 |
| 4.5 苏木素-伊红染色（HE染色） | 第29页 |
| 4.6 Masson复合染色 | 第29页 |
| 4.7 大鼠H9c2心肌细胞株的培养 | 第29-30页 |
| 4.8 大鼠H9c2心肌细胞株的分组和处理 | 第30页 |
| 4.9 大鼠H9c2细胞株和大鼠心脏组织总蛋白的提取及Western Blot | 第30-34页 |
| 4.9.1 大鼠H9c2细胞株总蛋白的提取 | 第30-31页 |
| 4.9.2 大鼠心肌组织总蛋白的提取 | 第31页 |
| 4.9.3 Thermo BCA kit对蛋白进行定量 | 第31-32页 |
| 4.9.4 蛋白变性 | 第32页 |
| 4.9.5 聚丙烯酰胺凝胶电泳（SDS-PAGE） | 第32-33页 |
| 4.9.6 转膜 | 第33页 |
| 4.9.7 封闭 | 第33页 |
| 4.9.8 加抗体 | 第33-34页 |
| 4.9.9 显色 | 第34页 |
| 4.10 大鼠H9c2心肌细胞株的Syk-siRNA序列的转染 | 第34页 |
| 4.11 大鼠H9c2心肌细胞株和大鼠心肌组织总RNA的提取及RT-PCR | 第34-38页 |
| 4.11.1 大鼠H9C2心肌细胞株总RNA的提取 | 第34-35页 |
| 4.11.2 大鼠心肌组织总RNA的提取 | 第35页 |
| 4.11.3 RNA逆转录 | 第35-36页 |
| 4.11.4 普通RT-PCR | 第36-37页 |
| 4.11.5 普通RT-PCR检测Syk-si RNA序列的转染效率 | 第37-38页 |
| 4.12 大鼠H9c2心肌细胞株的分组及real-time PCR | 第38-39页 |
| 4.12.1 大鼠H9c2心肌细胞株的分组 | 第38页 |
| 4.12.2 Real-time PCR | 第38-39页 |
| 4.13 统计学分析 | 第39-40页 |
| 结果 | 第40-49页 |
| 1 SD大鼠1型DCM动物模型的构建 | 第40-42页 |
| 2 DCM组大鼠心组织中p-Syk、p-JNK及NLRP3的表达 | 第42-43页 |
| 3 BAY61-3606 或SP对高糖诱导的NLRP3信号通路的作用 | 第43-46页 |
| 4 小干扰RNA对H9c2细胞株中Syk基因干扰效率的测定 | 第46页 |
| 5 Syk-siRNA干扰对高糖诱导的NLRP3信号通路激活的影响 | 第46-47页 |
| 6 Syk-siRNA干扰或BAY61-3606 处理对高糖刺激的JNK磷酸化的影响 | 第47-49页 |
| 讨论 | 第49-54页 |
| 结论 | 第54-55页 |
| 参考文献 | 第55-63页 |
| 发表论文和参加科研情况说明 | 第63-64页 |
| 附录 | 第64-68页 |
| 综述 糖尿病心肌病的研究进展 | 第68-75页 |
| 综述参考文献 | 第71-75页 |
| 致谢 | 第75-76页 |
| 个人简历 | 第76页 |
