缩略词 | 第7-8页 |
摘要 | 第8-10页 |
Abstract | 第10-13页 |
第一部分 | 第14-26页 |
1 前言 | 第14页 |
2 研究方法 | 第14-16页 |
2.1 资料来源及检索策略 | 第14-16页 |
2.2 纳入和排除标准 | 第16页 |
2.2.1 纳入标准 | 第16页 |
2.2.2 排除标准 | 第16页 |
2.3 分析指标 | 第16页 |
2.4 质量控制 | 第16页 |
2.5 统计学处理 | 第16页 |
3 结果 | 第16-21页 |
3.1 纳入文献情况 | 第16-18页 |
3.2 Meta分析结果 | 第18-21页 |
3.2.1 ADP诱导的血小板聚集率 | 第18页 |
3.2.2 胶原诱导的血小板聚集率 | 第18-20页 |
3.2.3 出血时间 | 第20-21页 |
3.2.4 发表偏倚的评估 | 第21页 |
4 讨论 | 第21-23页 |
5 结论 | 第23页 |
参考文献 | 第23-26页 |
第二部分 | 第26-57页 |
1 前言 | 第26-28页 |
2 实验流程 | 第28页 |
3 材料与方法 | 第28-39页 |
3.1 实验材料 | 第29-32页 |
3.1.1 细胞 | 第29页 |
3.1.2 仪器设备 | 第29-30页 |
3.1.3 试剂 | 第30-31页 |
3.1.4 常用液体配制 | 第31-32页 |
3.2 实验方法 | 第32-39页 |
3.2.1 活化血小板制备 | 第32-33页 |
3.2.1.1 血小板分离 | 第32-33页 |
3.2.1.2 血小板活化 | 第33页 |
3.2.1.3 血小板活化度测定 | 第33页 |
3.2.2. 人冠状动脉内皮细胞培 | 第33-34页 |
3.2.2.1 细胞复苏 | 第33页 |
3.2.2.2 细胞换液 | 第33-34页 |
3.2.2.3 细胞传代 | 第34页 |
3.2.2.4 细胞冻存 | 第34页 |
3.2.3 实验设计 | 第34-35页 |
3.2.3.1 阿司匹林实 | 第34-35页 |
3.2.3.2 银杏叶提取物实 | 第35页 |
3.2.3.3 联合组 | 第35页 |
3.2.4 内皮细胞内活性氧测 | 第35-36页 |
3.2.5 Western Blot测定NOX4和RhoA | 第36-39页 |
3.2.5.1 提取蛋白 | 第36页 |
3.2.5.2 BCA蛋白定量的方法进行蛋白定量 | 第36-37页 |
3.2.5.2.1 制作标准 | 第36-37页 |
3.2.5.2.2 测定样本总蛋 | 第37页 |
3.2.5.3 western Blot | 第37-39页 |
3.2.5.3.1 western Blot-配胶 | 第37-38页 |
3.2.5.3.2 western Blot-电泳 | 第38页 |
3.2.5.3.3 western Blot-转膜 | 第38页 |
3.2.5.3.4 western Blot-封闭、一抗和二抗孵育 | 第38-39页 |
3.2.5.3.5 western Blot-ECL发光、显影、定影 | 第39页 |
3.2.6 统计学方法 | 第39页 |
4 结果与分析 | 第39-47页 |
4.1 血小板活化度 | 第39页 |
4.2 内皮细胞内ROS测定结果 | 第39-43页 |
4.2.1 ASP抑制活化血小板诱导的氧化应激 | 第39页 |
4.2.2 EGb抑制活化血小板诱导的氧化应 | 第39-41页 |
4.2.3 ASP联合EGb抑制活化血小板诱导的氧化应 | 第41页 |
4.2.4 ASP联合EGb抑制细胞内ROS产生的拟合曲 | 第41-43页 |
4.3 western blot结果 | 第43-47页 |
4.3.1 建模结果 | 第43页 |
4.3.2 ASP抑制活化血小板诱导的RhoA和NOX4表达 | 第43-44页 |
4.3.3 EGb抑制活化血小板诱导的RhoA和NOX4表达 | 第44-45页 |
4.3.4 ASP联合EGb抑制活化血小板诱导的RhoA和NOX4表达 | 第45-46页 |
4.3.5 ASP联合EGb抑制细胞内的RhoA和NOX4表达的拟合曲 | 第46-47页 |
5 讨论 | 第47-50页 |
6 结论 | 第50-51页 |
参考文献 | 第51-57页 |
附录 | 第57-58页 |
致谢 | 第58-59页 |
综述 | 第59-65页 |
参考文献 | 第62-65页 |