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禽脑脊髓炎病毒VP1蛋白纳米抗体的筛选及活性检测

摘要第5-7页
ABSTRACT第7-8页
文献综述第12-23页
    第一章 禽脑脊髓炎研究进展第12-18页
        1.1 AEV病原学特征第12-15页
            1.1.1 AEV的历史背景与分类第12页
            1.1.2 病毒的形态特征及理化性质第12-13页
            1.1.3 病毒的增殖培养第13页
            1.1.4 AEV基因组第13-14页
            1.1.5VP1蛋白及功能第14页
            1.1.6 AEV VP1蛋白抗原表位分析第14-15页
        1.2 AE的流行病学第15-16页
        1.3 AEV致病机理第16页
        1.4 AE临床症状和病理变化第16页
        1.5 AEV检测第16-17页
        1.6 AE的防制第17-18页
    第二章 纳米抗体研究进展第18-23页
        2.1 纳米抗体的结构第18-19页
        2.2 纳米抗体的性质第19-20页
            2.2.1 亲和力高第19页
            2.2.2 高稳定性和水溶性第19-20页
            2.2.3 识别独特的抗原表位第20页
            2.2.4 容易表达和规模化生产第20页
            2.2.5 易多聚化成多价抗体第20页
        2.3 纳米抗体的应用第20-23页
            2.3.1 在基础研究领域的应用第20-21页
            2.3.2 作为诊断工具的使用第21-23页
实验研究第23-48页
    第三章 禽脑脊髓炎病毒VP1蛋白纳米抗体的筛选第23-35页
        3.1 材料第23-25页
            3.1.1 菌株、质粒、文库第23页
            3.1.2 引物第23-24页
            3.1.3 酶和试剂第24页
            3.1.4 主要培养基及常用试剂的配制第24-25页
            3.1.5 主要仪器第25页
        3.2 方法第25-28页
            3.2.1 pBD-VP1诱饵质粒的构建第25-27页
            3.2.2 诱饵质粒pBD-VP1毒性和自激活检测第27页
            3.2.3 文库筛选与鉴定第27-28页
        3.3 结果第28-33页
            3.3.1 AEV VP1基因扩增第28-29页
            3.3.2 诱饵质粒PCR和双酶切鉴定第29页
            3.3.3 诱饵质粒pBD-VP1测序第29-30页
            3.3.4 诱饵质粒pBD-VP1自激活检测第30页
            3.3.5 文库筛选第30-31页
            3.3.6 蓝色菌落进行菌落PCR鉴定第31页
            3.3.7 共转验证第31-32页
            3.3.8 阳性文库质粒测序第32-33页
        3.4 讨论第33-34页
        3.5 小结第34-35页
    第四章 禽脑脊髓炎病毒VP1蛋白纳米抗体的表达纯化与活性检测第35-48页
        4.1 材料第35-36页
            4.1.1 质粒、载体和菌株第35页
            4.1.2 主要试剂第35页
            4.1.3 常用缓冲液配制第35-36页
            4.1.4 主要仪器设备第36页
        4.2 方法第36-41页
            4.2.1 pET28as-VHH表达载体的构建第36-39页
            4.2.2 诱导表达纳米抗体第39-40页
            4.2.3 纳米抗体的制备纯化第40页
            4.2.4 间接ELISA检测VHH的活性第40-41页
            4.2.5 鸡胚中和试验检测VHH的活性第41页
        4.3 结果第41-47页
            4.3.1 pET28as-VHH表达载体的PCR鉴定第41页
            4.3.2 pET28as-VHH表达载体的酶切鉴定第41-42页
            4.3.3 pET28as-VHH表达载体测序第42-43页
            4.3.4 pET28as-VHH重组蛋白存在形式的检测第43页
            4.3.5 IPTG最佳诱导温度的确定第43-44页
            4.3.6 IPTG最佳诱导浓度的确定第44页
            4.3.7 最佳诱导时间的确定第44-45页
            4.3.8 重组VHH的表达与纯化第45-46页
            4.3.9 a重组VHH与AEV的反应活性第46页
            4.3.410 b鸡胚中和试验测定VHH活性第46-47页
        4.4 讨论第47页
        4.5 小结第47-48页
结论第48-49页
参考文献第49-56页
附录第56-60页
致谢第60-61页
作者简介第61页

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