| 致谢 | 第4-5页 |
| 摘要 | 第5-7页 |
| ABSTRACT | 第7-8页 |
| 第一章 绪论 | 第13-28页 |
| 1.1 引言 | 第13页 |
| 1.2 漆酶及其固定化 | 第13-19页 |
| 1.2.1 漆酶的来源 | 第13-14页 |
| 1.2.2 漆酶的结构性能 | 第14-15页 |
| 1.2.3 漆酶的催化底物 | 第15-16页 |
| 1.2.4 漆酶固定化研究 | 第16页 |
| 1.2.5 漆酶的固定化方法 | 第16-19页 |
| 1.3 聚合物膜表面的酶固定化研究 | 第19-24页 |
| 1.3.1 膜表面的酶固定化方法 | 第20-23页 |
| 1.3.2 膜表面的改性方法 | 第23-24页 |
| 1.3.3 漆酶固定化聚合物膜的应用 | 第24页 |
| 1.4 多巴胺及其表面改性 | 第24-25页 |
| 1.5 课题提出 | 第25-26页 |
| 1.6 课题研究内容 | 第26-28页 |
| 1.6.1 聚丙烯微孔膜表面沉积多巴胺 | 第26页 |
| 1.6.2 多巴胺改性聚丙烯微孔膜表面的化学法漆酶固定化 | 第26-27页 |
| 1.6.3 聚丙烯微孔膜表面共沉积多巴胺/聚乙烯亚胺 | 第27页 |
| 1.6.4 多巴胺/聚乙烯亚胺改性聚丙烯微孔膜表面的漆酶固定化 | 第27-28页 |
| 第二章 实验部分 | 第28-37页 |
| 2.1 实验原料 | 第28-29页 |
| 2.2 实验仪器设备 | 第29页 |
| 2.3 聚丙烯微孔膜表面的漆酶固定化 | 第29-31页 |
| 2.3.1 聚丙烯微孔膜表面多巴胺沉积 | 第29-30页 |
| 2.3.2 聚丙烯微孔膜表面化学法固定漆酶 | 第30页 |
| 2.3.3 聚丙烯微孔膜表面多巴胺/聚乙烯二胺共沉积 | 第30-31页 |
| 2.3.4 聚丙烯微孔膜表面矿化包埋法固定漆酶 | 第31页 |
| 2.4 聚丙烯微孔膜表征和漆酶固定机理研究 | 第31-33页 |
| 2.4.1 衰减全反射傅里叶变化红外光谱(FTIR-ATR) | 第31页 |
| 2.4.2 场发射扫面电子显微镜(FE-SEM) | 第31-32页 |
| 2.4.3 X谢线光电子能谱(XPS) | 第32页 |
| 2.4.4 水接触角(WCA) | 第32页 |
| 2.4.5 分子对接软件(Autodock) | 第32-33页 |
| 2.4.6 表面等离子共振仪(SPR) | 第33页 |
| 2.5 膜表面漆酶载酶量的测定 | 第33-34页 |
| 2.6 漆酶保留活性的测定 | 第34页 |
| 2.7 漆酶稳定性测定 | 第34-36页 |
| 2.8 漆酶催化降解活性的测定 | 第36-37页 |
| 第三章 多巴胺改性聚丙烯微孔膜的漆酶固定化研究 | 第37-52页 |
| 3.1 引言 | 第37-38页 |
| 3.2 聚丙烯微孔膜表面沉积多巴胺 | 第38-41页 |
| 3.2.1 沉积时间对多巴胺修饰层的影响 | 第38-39页 |
| 3.2.2 聚多巴胺改性的聚丙烯微孔膜的结构与性能表征 | 第39-41页 |
| 3.3 改性聚丙烯微孔膜表面的化学法固定漆酶的条件调控 | 第41-47页 |
| 3.3.1 固定时间对漆酶固定化的影响 | 第41-42页 |
| 3.3.2 漆酶浓度对漆酶固定化的影响 | 第42-43页 |
| 3.3.3 不同pH对固定过程的影响 | 第43-47页 |
| 3.4 改性聚丙烯微孔膜表面的化学法固定漆酶的效果 | 第47-49页 |
| 3.4.1 固定化漆酶的稳定性 | 第47-49页 |
| 3.4.2 固定化漆酶降解染料的活性 | 第49页 |
| 3.5 SPR模型表面研究漆酶在多巴胺表面的固定行为 | 第49-50页 |
| 3.6 本章小结 | 第50-52页 |
| 第四章 多巴胺/聚乙烯亚胺改性聚丙烯微孔膜的漆酶固定化 | 第52-62页 |
| 4.1 引言 | 第52-53页 |
| 4.2 聚丙烯微孔膜表面多巴胺/聚乙烯亚胺共沉积 | 第53-56页 |
| 4.2.1 多巴胺/聚乙烯亚胺沉积时间的影响 | 第53-54页 |
| 4.2.2 PDA/PEI共沉积及固定漆酶的MPPM表面结构和化学表征 | 第54-56页 |
| 4.3 改性聚丙烯微孔膜表面矿化包埋法固定漆酶的条件调控 | 第56-58页 |
| 4.3.1 矿化时间对漆酶固定化的影响 | 第56-58页 |
| 4.3.2 漆酶溶液浓度对漆酶固定化的影响 | 第58页 |
| 4.4 改性聚丙烯微孔膜表面矿化包埋法固定漆酶的效果 | 第58-60页 |
| 4.4.1 固定化漆酶的稳定性 | 第58-60页 |
| 4.4.2 固定化漆酶降解染料的活性 | 第60页 |
| 4.5 本章小结 | 第60-62页 |
| 第五章 全文总结 | 第62-64页 |
| 论文主要创新点 | 第64-65页 |
| 不足与展望 | 第65-66页 |
| 作者简介及硕士期间科研成果 | 第66-67页 |
| 参考文献 | 第67-77页 |
| 附录 聚(HEMA)/聚(HPMA)刷特异性吸附B-葡萄糖苷酶的研究 | 第77-100页 |
| 1 引言 | 第77-78页 |
| 2 实验方法 | 第78-82页 |
| 2.1 荧光光度计研究溶液中HEMA/HPMA与β-GLU的相互作用 | 第78页 |
| 2.2 MPPM表面接枝聚(HEMA)/聚(HPMA)刷对β-GLU的吸附 | 第78-80页 |
| 2.3 定量滤纸接枝聚(HEMA)/聚(HPMA)刷对β-GLU的吸附 | 第80页 |
| 2.4 金片(SPR)表面SI-ATRP法构建聚(HEMA)/聚(HPMA)刷 | 第80-81页 |
| 2.5 表面等离子共振仪(SPR)在线监测聚合物刷对蛋白质的吸附 | 第81-82页 |
| 2.6 计算机模拟聚合物与β-GLU的相互作用 | 第82页 |
| 3 结果与讨论 | 第82-98页 |
| 3.1 溶液中HEMA/HPMA单体与β-GLU的荧光淬灭作用 | 第82-84页 |
| 3.2 接枝聚(HEMA)/聚(HPMA)刷的MPPM表面对β-GLU的吸附 | 第84-87页 |
| 3.3 接枝聚(HEMA)/聚(HPMA)刷定量滤纸对β-GLU的吸附 | 第87-89页 |
| 3.4 金片表面聚合物刷的构建 | 第89-91页 |
| 3.5 聚(HEMA)/聚(HPMA)刷吸附β-GLU的效果 | 第91-94页 |
| 3.6 MVD(Molegro Mirtual Docker)模拟β-GLU与分子刷相互作用 | 第94-98页 |
| 4 结论 | 第98-100页 |
| 参考文献 | 第100页 |
