| 摘要 | 第3-4页 |
| abstract | 第4页 |
| 1 引言 | 第9-15页 |
| 1.1 神经胶质瘤的概述 | 第9页 |
| 1.2 肿瘤细胞与免疫系统的相互作用 | 第9-10页 |
| 1.3 AhR | 第10-11页 |
| 1.4 内源性小分子ITE | 第11-12页 |
| 1.5 肿瘤模型 | 第12-14页 |
| 1.5.1 U251胶质瘤模型 | 第12页 |
| 1.5.2 U87胶质瘤模型 | 第12-13页 |
| 1.5.3 G422模型 | 第13页 |
| 1.5.4 GL261模型 | 第13-14页 |
| 1.6 本研究的目的和意义 | 第14-15页 |
| 2 建立BALB/C小鼠G422腋下移植瘤模型 | 第15-30页 |
| 2.1 实验材料 | 第15页 |
| 2.1.1 细胞瘤株 | 第15页 |
| 2.1.2 实验动物 | 第15页 |
| 2.2 主要仪器及试剂 | 第15-16页 |
| 2.2.1 主要仪器 | 第15页 |
| 2.2.2 主要试剂及配制 | 第15-16页 |
| 2.3 实验方法 | 第16-24页 |
| 2.3.1 G422瘤株的培养 | 第16页 |
| 2.3.2 G422瘤株的冻存及冻存后接种 | 第16-17页 |
| 2.3.3 第一批BALB/c小鼠G422脑胶质瘤腋下模型建立 | 第17页 |
| 2.3.4 小鼠胶质瘤组织病理检查 | 第17-19页 |
| 2.3.5 第二批BALB/c小鼠G422脑胶质瘤腋下模型建立 | 第19页 |
| 2.3.6 荷瘤小鼠干扰素的检测 | 第19-24页 |
| 2.4 实验结果 | 第24-29页 |
| 2.4.1 第一批G422模型时间轴和ITE对肿瘤生长的影响 | 第24-25页 |
| 2.4.2 G422肿瘤组织中CD8+-细胞的浸润情况 | 第25-26页 |
| 2.4.3 第二批G422模型时间轴和ITE对小鼠生存期的影响 | 第26-28页 |
| 2.4.4 ELISPOT刺激脾细胞分泌IFN-γ结果 | 第28-29页 |
| 2.5 小结 | 第29-30页 |
| 3 建立C57BL/6小鼠GL261脑内移植瘤模型 | 第30-38页 |
| 3.1 实验材料 | 第30页 |
| 3.1.1 实验动物 | 第30页 |
| 3.1.2 细胞株 | 第30页 |
| 3.1.3 主要仪器设备 | 第30页 |
| 3.1.4 主要试剂 | 第30页 |
| 3.2 实验方法 | 第30-33页 |
| 3.2.1 冻存GL261细胞的复苏和GL261细胞的体外培养 | 第30-31页 |
| 3.2.2 建立C57BL/6小鼠GL261脑胶质瘤原位模型 | 第31-32页 |
| 3.2.3 小鼠GL261脑胶质瘤组织的病理学检查 | 第32-33页 |
| 3.3 实验结果 | 第33-37页 |
| 3.3.1 GL261细胞培养结果 | 第33页 |
| 3.3.2 治疗后小鼠体重的变化情况 | 第33-35页 |
| 3.3.3 小鼠脑肿瘤组织中CD8+细胞浸润情况 | 第35-37页 |
| 3.4 小结 | 第37-38页 |
| 4 免疫缺陷小鼠的培养及肿瘤模型的建立 | 第38-43页 |
| 4.1 实验材料 | 第38页 |
| 4.1.1 主要仪器设备 | 第38页 |
| 4.1.2 主要试剂 | 第38页 |
| 4.1.3 细胞株 | 第38页 |
| 4.1.4 实验动物 | 第38页 |
| 4.2 实验方法 | 第38-40页 |
| 4.2.1 B104-1-1细胞的复苏及培养 | 第38-39页 |
| 4.2.2 实验动物的培养 | 第39-40页 |
| 4.2.3 免疫缺陷小鼠肿瘤模型的建立 | 第40页 |
| 4.3 实验结果 | 第40-42页 |
| 4.3.1 B104-1-1细胞培养结果 | 第40-41页 |
| 4.3.2 B104-1-1肿瘤模型的建立及治疗 | 第41页 |
| 4.3.3 药物治疗对荷瘤小鼠肿瘤大小的影响 | 第41-42页 |
| 4.4 小结 | 第42-43页 |
| 5 讨论 | 第43-45页 |
| 6 结论 | 第45-46页 |
| 致谢 | 第46-47页 |
| 参考文献 | 第47-51页 |
| 作者简介 | 第51页 |
