| 摘要 | 第7-9页 |
| ABSTRACT | 第9-11页 |
| 符号及缩略语 | 第12-14页 |
| 第一章 文献综述 | 第14-28页 |
| 1 牛膝多糖的研究进展 | 第14-17页 |
| 1.1 牛膝多糖的理化性质和结构 | 第14-15页 |
| 1.2 牛膝多糖的药理作用 | 第15-16页 |
| 1.3 在动物上的作用效果 | 第16-17页 |
| 2 脂质体 | 第17-24页 |
| 2.1 脂质体的组成 | 第17-18页 |
| 2.2 脂质体的特点 | 第18-19页 |
| 2.3 脂质体的制备方法 | 第19-21页 |
| 2.4 脂质体的应用 | 第21-23页 |
| 2.5 脂质体当前存在的问题及建议 | 第23页 |
| 2.6 本研究的目的意义 | 第23-24页 |
| 参考文献 | 第24-28页 |
| 第二章 牛膝多糖脂质体的制备及制备条件的优化 | 第28-42页 |
| 1 材料与方法 | 第29-32页 |
| 1.1 试验药物 | 第29页 |
| 1.2 主要试剂 | 第29页 |
| 1.3 主要仪器设备 | 第29页 |
| 1.4 ABPSL的制备 | 第29-30页 |
| 1.5 ABPSL包封率及载药量的测定 | 第30页 |
| 1.6 ABPSL制备工艺的优化 | 第30-32页 |
| 2 结果 | 第32-40页 |
| 2.1 单因素试验结果 | 第32-34页 |
| 2.2 响应面优化条件结果 | 第34-36页 |
| 2.3 响应面分析 | 第36-39页 |
| 2.4 ABPSL的形态特点 | 第39-40页 |
| 3 讨论 | 第40页 |
| 参考文献 | 第40-42页 |
| 第三章 牛膝多糖脂质体体外对小鼠淋巴细胞增殖的影响 | 第42-50页 |
| 1 材料与方法 | 第42-45页 |
| 1.1 试验药物 | 第42-43页 |
| 1.2 主要试剂 | 第43-44页 |
| 1.3 主要仪器 | 第44页 |
| 1.4 小鼠脾脏T、B淋巴细胞增殖 | 第44-45页 |
| 1.5 数据分析 | 第45页 |
| 2 结果 | 第45-48页 |
| 2.1 最大安全浓度 | 第45-46页 |
| 2.2 淋巴细胞增殖 | 第46-48页 |
| 3 讨论 | 第48-49页 |
| 参考文献 | 第49-50页 |
| 第四章 牛膝多糖脂质体对小鼠淋巴细胞亚群的影响 | 第50-56页 |
| 1 材料与方法 | 第50-52页 |
| 1.1 试验药物 | 第50-51页 |
| 1.2 主要试剂 | 第51页 |
| 1.3 试验动物 | 第51页 |
| 1.4 主要仪器 | 第51页 |
| 1.5 T淋巴细胞亚群CD4~+、CD8~+的含量测定 | 第51-52页 |
| 1.6 数据分析 | 第52页 |
| 2 结果 | 第52-54页 |
| 2.1 流式细胞检测结果 | 第52-53页 |
| 2.2 不同组对CD4~+淋巴细胞含量及CD4~+/CD8~+比值的影响 | 第53-54页 |
| 3 讨论 | 第54页 |
| 参考文献 | 第54-56页 |
| 第五章 牛膝多糖脂质体体外对巨噬细胞免疫功能的作用 | 第56-62页 |
| 1 材料与方法 | 第56-58页 |
| 1.1 试验动物 | 第56-57页 |
| 1.2 试验药物 | 第57页 |
| 1.3 主要试剂 | 第57页 |
| 1.4 主要仪器 | 第57页 |
| 1.5 腹腔巨噬细胞的分离培养 | 第57页 |
| 1.6 测定巨噬细胞上清细胞因子的含量 | 第57-58页 |
| 2 结果 | 第58-60页 |
| 2.1 各组刺激巨噬细胞分泌IL-1β的影响 | 第58-59页 |
| 2.2 各组刺激巨噬细胞分泌IFN-γ的影响 | 第59页 |
| 2.3 各组刺激巨噬细胞分泌IFN-γ的影响 | 第59-60页 |
| 3 讨论 | 第60-61页 |
| 参考文献 | 第61-62页 |
| 全文结论 | 第62-63页 |
| 论文创新点 | 第63-64页 |
| 致谢 | 第64页 |
