| 摘要 | 第5-8页 |
| Abstract | 第8-11页 |
| 第1章 绪论 | 第16-34页 |
| 1.1 生物传感器 | 第16-17页 |
| 1.1.1 生物传感器的概述 | 第16页 |
| 1.1.2 生物传感器的原理 | 第16-17页 |
| 1.1.3 生物传感器的分类和特点 | 第17页 |
| 1.2 纳米材料及其在生物传感器方面的应用 | 第17-27页 |
| 1.2.1 石墨烯和氧化石墨烯 | 第18-21页 |
| 1.2.2 纳米金 | 第21-24页 |
| 1.2.3 硅纳米材料 | 第24-26页 |
| 1.2.4 水溶性的荧光高分子聚合物 | 第26-27页 |
| 1.2.5 基于其它纳米材料的生物传感器 | 第27页 |
| 1.3 等温核酸放大技术 | 第27-32页 |
| 1.3.1 指数扩增恒温放大技术 | 第27-30页 |
| 1.3.2 线性等温核酸放大技术 | 第30-32页 |
| 1.4 本研究论文的工作内容 | 第32-34页 |
| 第2章 等离子体耦合增强拉曼散射纳米探针用于单步的超灵敏的霍乱毒素的检测 | 第34-45页 |
| 2.1 前言 | 第34-35页 |
| 2.2 实验部分 | 第35-37页 |
| 2.2.1 试剂 | 第35页 |
| 2.2.2 仪器 | 第35页 |
| 2.2.3 金纳米颗粒（AuNPs）的合成 | 第35-36页 |
| 2.2.4 等离子体耦合增强拉曼散射（PCERS）纳米信标的合成 | 第36页 |
| 2.2.5 霍乱毒素的均相、单步测定 | 第36-37页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第37-43页 |
| 2.3.1 实验设计原理 | 第37-38页 |
| 2.3.2 PCERS纳米探针的合成与表征 | 第38-40页 |
| 2.3.3 实验原理的验证 | 第40-42页 |
| 2.3.4 分析方法的响应性能研究 | 第42页 |
| 2.3.5 纳米探针的稳定性能研究 | 第42-43页 |
| 2.3.6 分析方法回收率的测定 | 第43页 |
| 2.4 小结 | 第43-45页 |
| 第3章 基于催化发夹组装及酶修复放大对微小核糖核酸的超灵敏检测 | 第45-57页 |
| 3.1 前言 | 第45-46页 |
| 3.2 实验部分 | 第46-48页 |
| 3.2.1 试剂与仪器 | 第46-47页 |
| 3.2.2 CHA-ERA放大方法用于miRNA的检测 | 第47页 |
| 3.2.3 凝胶电泳分析 | 第47页 |
| 3.2.4 细胞的培养与总RNA提取 | 第47-48页 |
| 3.2.5 定量PCR检测细胞中的miRNA | 第48页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第48-56页 |
| 3.3.1 实验设计原理 | 第48-49页 |
| 3.3.2 实验原理的验证 | 第49-51页 |
| 3.3.3 实验条件的优化 | 第51-52页 |
| 3.3.4 分析方法的响应性能研究 | 第52-53页 |
| 3.3.5 分析方法的特异性研究 | 第53-54页 |
| 3.3.6 复杂体系中miRNA的测定 | 第54-56页 |
| 3.4 小结 | 第56-57页 |
| 第4章 基于二氧化硅量子点的双响应比率型荧光探针用于次氯酸盐和温度的检测 | 第57-69页 |
| 4.1 前言 | 第57-58页 |
| 4.2 实验部分 | 第58-60页 |
| 4.2.1 试剂与仪器 | 第58页 |
| 4.2.2 二氧化硅量子点的制备 | 第58-59页 |
| 4.2.3 RBITC修饰的FSNP的荧光传感器的制备 | 第59页 |
| 4.2.4 DRFS探针对ClO~-的响应 | 第59页 |
| 4.2.5 细胞培养和光学成像 | 第59-60页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第60-68页 |
| 4.3.1 实验设计原理 | 第60页 |
| 4.3.2 探针DRFS的表征 | 第60-62页 |
| 4.3.3 探针DRFS合成的优化 | 第62-63页 |
| 4.3.4 实验原理的验证 | 第63页 |
| 4.3.5 分析方法对ClO~-的响应性能研究 | 第63-65页 |
| 4.3.6 分析方法对ClO~-的响应特异性研究 | 第65页 |
| 4.3.7 回收率的测定 | 第65-66页 |
| 4.3.8 DRFS探针对温度的比率型响应 | 第66-67页 |
| 4.3.9 DRFS探针用于Hela细胞外源性ClO~-的荧光成像 | 第67-68页 |
| 4.4 小结 | 第68-69页 |
| 第5章 基于静电核酸纳米组装的邻近杂交链反应用于ATP的活细胞成像 | 第69-80页 |
| 5.1 前言 | 第69-70页 |
| 5.2 实验部分 | 第70-72页 |
| 5.2.1 材料与试剂 | 第70页 |
| 5.2.2 表面氨基功能化荧光聚合物纳米粒子的合成 | 第70页 |
| 5.2.3 DNA纳米复合物的制备 | 第70-71页 |
| 5.2.4 表面氨基功能化荧光聚合物纳米粒子的表征 | 第71页 |
| 5.2.5 探针体外检测ATP | 第71页 |
| 5.2.6 细胞培养与光学成像 | 第71-72页 |
| 5.2.7 DNA纳米组装细胞毒性的检测 | 第72页 |
| 5.3 结果与讨论 | 第72-79页 |
| 5.3.1 实验设计原理 | 第72-73页 |
| 5.3.2 表面氨基功能化荧光聚合物纳米粒子的表征 | 第73-74页 |
| 5.3.3 实验原理的验证 | 第74-75页 |
| 5.3.4 分析方法的响应性能研究 | 第75-76页 |
| 5.3.5 分析方法的特异性研究 | 第76-77页 |
| 5.3.6 细胞毒性的分析 | 第77页 |
| 5.3.7 原位活细胞的成像 | 第77-78页 |
| 5.3.8 原位ATP的半定量分析 | 第78-79页 |
| 5.4 小结 | 第79-80页 |
| 第6章 基于DNA组装氧化石墨烯的双响应肿瘤靶向荧光成像和协同治疗 | 第80-91页 |
| 6.1 前言 | 第80-81页 |
| 6.2 实验部分 | 第81-84页 |
| 6.2.1 试剂与仪器 | 第81-82页 |
| 6.2.2 GO-PEG-DNA纳米复合物的制备 | 第82-83页 |
| 6.2.3 细胞培养与荧光检测 | 第83-84页 |
| 6.2.4 细胞流式分析 | 第84页 |
| 6.3 结果与讨论 | 第84-90页 |
| 6.3.1 实验设计原理 | 第84-85页 |
| 6.3.2 纳米复合物组装过程的表征 | 第85-86页 |
| 6.3.3 熔链曲线分析 | 第86页 |
| 6.3.4 实验原理的验证 | 第86-88页 |
| 6.3.5 纳米复合物进行活细胞成像 | 第88-89页 |
| 6.3.6 纳米复合物的实时细胞成像 | 第89页 |
| 6.3.7 GO-PEG-A-GC纳米复合物对DNMT1的抑制作用考察 | 第89-90页 |
| 6.4 小结 | 第90-91页 |
| 结论 | 第91-93页 |
| 参考文献 | 第93-117页 |
| 附录A 攻读学位期间发表的学术论文目录 | 第117-118页 |
| 致谢 | 第118页 |
