| 摘要 | 第1-7页 |
| Abstract | 第7-12页 |
| 第一章 研究绪论 | 第12-23页 |
| 第一节 禽流感病毒背景介绍 | 第12-17页 |
| ·禽流感病毒的基因组结构及其编码的蛋白功能 | 第12-13页 |
| ·禽流感病毒主要亚型及其危害 | 第13-15页 |
| ·H9N2亚型禽流感病毒的特征及其致病性 | 第15-17页 |
| 第二节 急性肺损伤和继发性肺损伤的国内外研究现状 | 第17-19页 |
| ·急性肺损伤的国内外研究现状 | 第17-18页 |
| ·继发性肺损伤的国内外研究现状 | 第18-19页 |
| 第三节 SOCS3背景及功能介绍 | 第19-22页 |
| ·SOCS蛋白家族理化特征及生物调节功能 | 第19-20页 |
| ·SOCS3在机体免疫调节中的作用机理 | 第20-21页 |
| ·SOCS3与禽流感病毒、LPS诱导肺损伤之间相互作用的研究现状 | 第21-22页 |
| 第四节 本研究拟探讨的科学问题 | 第22-23页 |
| 第二章 SOCS3在H9N2-AIV诱发急性肺损伤以及继发性肺损伤中的作用研究 | 第23-68页 |
| 第一节 前言 | 第23页 |
| 第二节 实验材料 | 第23-24页 |
| 第三节 实验方法及步骤 | 第24-41页 |
| ·MLE-12细胞的培养 | 第24页 |
| ·H9N2-AIV在MLE-12细胞上病毒滴度的测定 | 第24-25页 |
| ·H9N2-AIV侵染MLE-12细胞后,SOCS3表达量变化的动态评价 | 第25页 |
| ·SOCS3-shRNA慢病毒载体的构建 | 第25-27页 |
| ·SOCS3-shRNA质粒转染MLE-12细胞,SOCS3表达量变化的动态评价 | 第27-28页 |
| ·H9N2-AIV感染MLE-12细胞后12小时,SOCS3-shRNA对SOCS3、SOCS1、M基因及相关炎症因子表达量影响的检测 | 第28-33页 |
| ·SOCS3-pCDNA3.1(+)重组载体构建 | 第33-36页 |
| ·脂质体介导SOCS3-pCDNA3.1(+)重组载体转染MLE-12细胞,检测SOCS | 第36-37页 |
| ·H9N2-AIV感染MLE-12细胞后12小时,SOCS3-pCDNA3.1(+)对SOCS3、SOCS1、M基因及相关炎症因子表达量影响的检测 | 第37页 |
| ·SOCS3在体内对LPS诱导H9N2-AIV继发性肺损伤的作用研究 | 第37-40页 |
| ·数据统计方法 | 第40-41页 |
| 第四节 实验结果 | 第41-63页 |
| ·H9N2-AIV侵染MLE-12细胞后,SOCS3表达量变化的动态评价结果 | 第41-42页 |
| ·SOCS3-shRNA重组质粒转染MLE-12细胞,SOCS3表达量变化的动态评价结果 | 第42-44页 |
| ·H9N2-AIV感染MLE-12细胞后12小时,SOCS3-shRNA对SOCS3基因表达影响的检测 | 第44-46页 |
| ·H9N2-AIV感染MLE-12细胞后12小时,SOCS3-shRNA对SOCS1、M基因及相关炎症因子表达量影响的检测 | 第46-48页 |
| ·脂质体介导SOCS3-pCDNA3.1(+)重组载体转染MLE-12细胞,SOCS3表达量变化的检测 | 第48-50页 |
| ·H9N2-AIV感染MLE-12细胞后12小时,SOCS3-pCDNA3.1(+)对SOCS3、SOCS1、M基因及相关炎症因子表达量影响的检测结果 | 第50-52页 |
| ·LPS感染H9N2-AIV(LPS、H9N2-AIV混合感染)小鼠实验结果 | 第52-58页 |
| ·SOCS3-pCDNA3.1(+)重组质粒导入LPS、H9N2-AIV混合感染小鼠体内功能评价结果 | 第58-63页 |
| 第五节 分析与讨论 | 第63-68页 |
| ·SOCS3在H9N2-AIV诱发急性肺损伤中的作用 | 第63-64页 |
| ·LPS、H9N2-AIV混合感染小鼠诱发继发细菌性肺炎分析 | 第64-65页 |
| ·SOCS3在体内对LPS诱导H9N2-AIV继发性肺损伤的免疫调节功能分析 | 第65-68页 |
| 第三章 结论与展望 | 第68-69页 |
| 第一节 结论 | 第68页 |
| 第二节 展望 | 第68-69页 |
| 参考文献 | 第69-78页 |
| 发表文章 | 第78-79页 |
| 致谢 | 第79页 |
