| 摘要 | 第1-7页 |
| ABSTRACT | 第7-9页 |
| 符号说明 | 第9-10页 |
| 前言 | 第10-11页 |
| 立题依据 | 第11-13页 |
| 实验研究 | 第13页 |
| 第一章 材料与方法 | 第13-21页 |
| 1 实验动物 | 第13页 |
| 2 实验药物与试剂 | 第13页 |
| 3 主要仪器设备 | 第13页 |
| 4 实验方法 | 第13-14页 |
| ·动物分组 | 第13-14页 |
| ·动物造模 | 第14页 |
| ·动物给药 | 第14页 |
| ·形态学观察 | 第14页 |
| ·标本取材 | 第14页 |
| 5 指标检测 | 第14-18页 |
| ·HE染色 | 第14-15页 |
| ·甲苯胺蓝染色 | 第15页 |
| ·Masson三色改良法 | 第15页 |
| ·苦味酸天狼猩红染色 | 第15页 |
| ·免疫组化染色 | 第15-16页 |
| ·RT-PCR法测定CD68、CD34+、VEGF、α-SM actin的表达 | 第16-18页 |
| 6 图像采集分析 | 第18-19页 |
| 7 统计学分析 | 第19-20页 |
| 8 技术路线图 | 第20-21页 |
| 第二章 结果 | 第21-29页 |
| 1 形态学观察结果 | 第21页 |
| 2 组织学观察结果 | 第21-23页 |
| 3 免疫组化结果 | 第23-24页 |
| ·CD68各时间点（Integral Optic Density，IOD）变化 | 第23页 |
| ·VEGF各时间点（Integral Optic Density，IOD）变化 | 第23-24页 |
| 4 RT-PCR检测结果 | 第24-29页 |
| ·CD68 | 第24-25页 |
| ·VEGF | 第25-26页 |
| ·CD34+ | 第26-27页 |
| ·α-SM actin | 第27-29页 |
| 第三章 讨论 | 第29-36页 |
| 1 参芪促愈汤组方依据 | 第29-30页 |
| 2 动物模型选择依据 | 第30页 |
| 3 对照组设立依据 | 第30页 |
| 4 皮肤切.的愈合机制 | 第30-31页 |
| 5 组织学研究 | 第31-33页 |
| 6 免疫学研究 | 第33-34页 |
| 7 RT-PCR研究 | 第34-36页 |
| 第四章 结语 | 第36-37页 |
| 1 结论 | 第36页 |
| 2 问题与展望 | 第36-37页 |
| 参考文献 | 第37-40页 |
| 附录 | 第40-70页 |
| 附图一：实验动物合格证书 | 第40-41页 |
| 附图二：造模 | 第41-42页 |
| 附图三：形态学观察 | 第42-46页 |
| 附图四：组织学切片图 | 第46-62页 |
| 附图五：免疫组化表达 | 第62-70页 |
| 文献综述 | 第70-76页 |
| 参考文献 | 第74-76页 |
| 致谢 | 第76-77页 |
| 在学校期间主要研究成果 | 第77页 |
