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FKBP12.6在小鼠脑缺血损伤中的作用及CDC42缺失对小鼠摄食的影响

摘要第1-6页
abstract第6-11页
中英文缩略词表第11-12页
第一部分 FKBP12.6 在小鼠脑缺血损伤中的作用第12-36页
 第1章 引言第12-16页
   ·研究脑缺血的意义第12页
   ·脑缺血再灌注损伤机制的研究进展第12-14页
     ·钙离子超载第13页
     ·自由基损伤第13页
     ·兴奋性氨基酸的过量释放第13-14页
     ·凋亡因子的转录表达第14页
     ·其他第14页
   ·FKBP12.6 蛋白第14-16页
 第2章 材料与方法第16-27页
   ·实验动物的选择第16-17页
   ·实验模型的选择第17-18页
   ·小鼠基因型鉴定第18-20页
     ·DNA提取第18-19页
     ·PCR鉴定第19-20页
   ·小鼠中脑动脉阻塞模型操作步骤第20-21页
   ·脑切片TTC染色第21页
   ·胎鼠原代脑皮层神经元细胞培养第21-25页
     ·所需试剂第21-22页
     ·前期准备第22-23页
     ·实验步骤第23-24页
     ·实验总流程第24-25页
     ·注意事项第25页
   ·OGD-R模型的建立第25-27页
     ·实验所需试剂及仪器第25-26页
     ·实验步骤第26-27页
 第3章 研究结果第27-34页
   ·动物水平检测第27-31页
   ·细胞水平检测第31-34页
 第4章 讨论第34-36页
第二部分 CDC42 缺失对小鼠摄食的影响第36-54页
 第1章 引言第36-39页
   ·CDC42 蛋白第36-37页
   ·下丘脑弓状核第37-38页
   ·UCP1 蛋白第38-39页
 第2章 材料与方法第39-48页
   ·Rip-Cre特异性敲除CDC42 小鼠第39页
   ·CDC42 敲除小鼠基因型鉴定第39-40页
   ·监测摄食第40-41页
     ·小鼠禁食后摄食实验第40-41页
     ·正常摄食实验第41页
   ·免疫组化第41-47页
     ·冰冻切片免疫组化第41-44页
     ·石蜡切片免疫组化第44-47页
   ·脑切片HE染色第47-48页
 第3章 实验结果第48-53页
   ·CDC42 基因敲除对摄食的影响第48-51页
     ·禁食实验第48-49页
     ·正常摄食实验第49-51页
   ·CDC42 在脑部弓状体的的表达第51页
   ·CDC42 条件性敲除对脑结构的影响第51-53页
 第4章 讨论第53-54页
全文结论第54-55页
致谢第55-56页
参考文献第56-59页
综述第59-66页
 参考文献第65-66页

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