摘要 | 第1-7页 |
ABSTRACT | 第7-11页 |
缩略词表 | 第11-17页 |
第一章 绪论 | 第17-25页 |
·西医对抑郁症的研究进展 | 第17-21页 |
·西医病因学 | 第17-19页 |
·西医研究现状 | 第19-21页 |
·中医对抑郁症的研究进展 | 第21-23页 |
·中医病因学 | 第21-22页 |
·中医研究现状 | 第22-23页 |
·本文立题依据与研究思路 | 第23-25页 |
·枳实与抑郁症的关系 | 第23页 |
·辛弗林与抑郁症的关系 | 第23-24页 |
·研究内容与预期目标 | 第24-25页 |
第二章 慢性应激抑郁大鼠模型的建立 | 第25-40页 |
·引言 | 第25-26页 |
·实验材料 | 第26-27页 |
·药材与药品 | 第26-27页 |
·给药剂量的确定 | 第27页 |
·实验仪器 | 第27页 |
·实验动物 | 第27页 |
·实验部分 | 第27-30页 |
·实验动物分组 | 第27-28页 |
·慢性应激抑郁模型的建立 | 第28-29页 |
·实验动物给药 | 第29页 |
·实验动物组织取材与保存 | 第29-30页 |
·实验动物模型评价指标 | 第30-31页 |
·敞箱实验(Open-fild) | 第30页 |
·悬尾实验 | 第30页 |
·强迫游泳实验 | 第30页 |
·体重测定及行为观察 | 第30-31页 |
·24h摄食量测定 | 第31页 |
·糖水消耗实验 | 第31页 |
·实验结果 | 第31-38页 |
·不同阶段行为学观察指标 | 第31页 |
·数据处理与统计 | 第31-32页 |
·敞箱实验 | 第32-33页 |
·悬尾实验 | 第33-34页 |
·强迫游泳实验 | 第34-35页 |
·大鼠体重与一般行为学观察 | 第35-36页 |
·24h摄食量实验 | 第36-37页 |
·糖水实验 | 第37-38页 |
·讨论与小结 | 第38-40页 |
第三章 HPLC-FLD法测定大鼠脑内单胺类神经递质 | 第40-50页 |
·引言 | 第40-41页 |
·实验材料 | 第41页 |
·实验试剂 | 第41页 |
·实验仪器 | 第41页 |
·实验部分 | 第41-43页 |
·色谱条件 | 第42页 |
·溶液的配制 | 第42页 |
·单胺递质混合标准溶液的制备 | 第42页 |
·标准曲线的制备 | 第42-43页 |
·脑组织样本溶液的制备 | 第43页 |
·实验结果 | 第43-49页 |
·单胺类神经递质标准曲线 | 第43-44页 |
·大鼠脑内单胺神经递质含量变化 | 第44-46页 |
·单胺递质重复性 | 第46-47页 |
·日内与日间精密度 | 第47-48页 |
·相对回收率 | 第48-49页 |
·讨论与小结 | 第49-50页 |
第四章 酶联免疫法测定大鼠血清中皮质酮(CORT)含量 | 第50-54页 |
·引言 | 第50页 |
·实验材料 | 第50-51页 |
·实验仪器 | 第50-51页 |
·实验试剂 | 第51页 |
·实验部分 | 第51页 |
·取材 | 第51页 |
·大鼠血清皮质酮含量测定 | 第51页 |
·实验结果 | 第51-53页 |
·酶联免疫标准曲线 | 第52页 |
·大鼠血清皮质酮含量变化 | 第52-53页 |
·讨论与小结 | 第53-54页 |
第五章 电镜法观察海马神经元超微结构变化 | 第54-58页 |
·引言 | 第54页 |
·实验材料 | 第54-55页 |
·实验仪器 | 第54-55页 |
·实验试剂 | 第55页 |
·实验部分 | 第55-56页 |
·取材 | 第55页 |
·扫描电镜样品制备 | 第55页 |
·透射电镜样品制备 | 第55-56页 |
·扫描样品观察 | 第56页 |
·实验结果 | 第56-57页 |
·讨论与小结 | 第57-58页 |
第六章 HE染色技术观察肾上腺及海马神经元病理结构变化 | 第58-63页 |
·引言 | 第58页 |
·实验材料 | 第58-59页 |
·实验仪器 | 第58-59页 |
·实验试剂 | 第59页 |
·实验部分 | 第59页 |
·常规石蜡切片 | 第59页 |
·HE染色 | 第59页 |
·染色现象 | 第59页 |
·实验结果 | 第59-61页 |
·肾上腺病理结构变化 | 第60-61页 |
·海马CA3区形态学变化 | 第61页 |
·讨论与小结 | 第61-63页 |
第七章 免疫组化技术检测大鼠海马BDNF和GR含量变化 | 第63-68页 |
·前言 | 第63-64页 |
·实验材料 | 第64页 |
·实验仪器 | 第64页 |
·实验试剂 | 第64页 |
·实验部分 | 第64-65页 |
·取材 | 第64-65页 |
·实验步骤 | 第65页 |
·实验结果 | 第65-67页 |
·免疫组化技术观察BDNF表达水平的变化 | 第65-66页 |
·免疫组化技术观察GR表达水平变化 | 第66-67页 |
·讨论与小结 | 第67-68页 |
第八章 RT-PCR技术检测大鼠海马BDNF和GR含量变化 | 第68-73页 |
·前言 | 第68页 |
·实验材料 | 第68页 |
·实验仪器 | 第68页 |
·实验试剂 | 第68页 |
·实验部分 | 第68-71页 |
·引物设计 | 第68-69页 |
·Trizol法抽提总RNA | 第69页 |
·RT产物 | 第69-70页 |
·PCR反应 | 第70页 |
·PCR程序 | 第70-71页 |
·电泳成像 | 第71页 |
·数码拍照分析条带 | 第71页 |
·实验结果 | 第71-72页 |
·BDNF表达水平变化 | 第71页 |
·GR表达水平变化 | 第71-72页 |
·讨论与小结 | 第72-73页 |
本文小结 | 第73-74页 |
参考文献 | 第74-79页 |
附录 | 第79-82页 |
致谢 | 第82-83页 |
硕士期间已发表和待发表的学术论文 | 第83页 |