| 中文摘要 | 第1-5页 |
| Abstract | 第5-8页 |
| 本论文中常用英文缩写缩写词汇含义说明 | 第8-13页 |
| 第一部分 文献综述 | 第13-27页 |
| 第一章 α-疱疹病毒的研究进展 | 第13-21页 |
| 1 α-疱疹病毒的病原学特征 | 第13-15页 |
| ·形态学特征 | 第13页 |
| ·基因特性 | 第13-15页 |
| 2 α-疱疹病毒流行病学 | 第15-18页 |
| ·单纯疱疹病毒流行病学 | 第15-16页 |
| ·水痘-带状疱疹病毒流行病学 | 第16页 |
| ·马立克病毒流行病学 | 第16-17页 |
| ·传染性喉气管炎病毒流行病学 | 第17页 |
| ·鸭肠炎病毒流行病学 | 第17-18页 |
| 3 α-疱疹病毒DNA疫苗的研究 | 第18-21页 |
| ·DNA疫苗的原理 | 第18-19页 |
| ·α-疱疹病毒DNA疫苗的研究概况 | 第19-21页 |
| 第二章 细胞免疫重要指标的研究进展概述 | 第21-27页 |
| 1 白细胞介素-2的研究 | 第21-22页 |
| 2 白细胞介素-4的研究 | 第22-23页 |
| 3 白细胞介素-12的研究 | 第23-24页 |
| 4 干扰素-γ的研究 | 第24页 |
| 5 CD3的研究 | 第24-26页 |
| 6 CD4与CD8的研究 | 第26-27页 |
| 第二部分 试验研究 | 第27-74页 |
| 第三章 质粒pVAX1-UL24,pVAX1-LTB,pVAX1-LTB-UL24的提取与鉴定 | 第27-35页 |
| 1 试验材料 | 第27-28页 |
| ·菌种 | 第27页 |
| ·主要试剂及配制 | 第27-28页 |
| ·主要仪器 | 第28页 |
| 2 试验方法 | 第28-32页 |
| ·应用碱裂解法大量抽提质粒 | 第28-30页 |
| ·细菌的复苏和培养 | 第28-29页 |
| ·质粒的抽提 | 第29页 |
| ·质粒DNA的粗提 | 第29页 |
| ·质粒DNA的纯化 | 第29-30页 |
| ·酶切鉴定质粒 | 第30-32页 |
| ·pVAX1-LTB质粒的酶切鉴定 | 第30-31页 |
| ·pVAX1-UL24质粒的酶切鉴定 | 第31页 |
| ·pVAX1-LTB-UL24质粒的酶切鉴定 | 第31-32页 |
| 3 试验结果 | 第32-34页 |
| ·pVAX1-LTB质粒的酶切结果 | 第32-33页 |
| ·pVAX1-UL24质粒的酶切结果 | 第33页 |
| ·pVAX1-LTB-UL24质粒的酶切结果 | 第33-34页 |
| 4 讨论与分析 | 第34-35页 |
| ·质粒载体 | 第34页 |
| ·质粒DNA的提取和纯化 | 第34-35页 |
| 第四章 DEV UL24基因疫苗诱导试验鸭外周血T淋巴细胞亚群数量变化的研究 | 第35-51页 |
| 1 试验材料 | 第35-36页 |
| ·毒株、疫苗 | 第35页 |
| ·试验动物 | 第35-36页 |
| ·主要试验仪器 | 第36页 |
| ·主要试剂 | 第36页 |
| ·主要试剂的配置 | 第36页 |
| 2 试验方法 | 第36-39页 |
| ·动物免疫 | 第36-37页 |
| ·样品的采集 | 第37页 |
| ·MTT法检测T淋巴细胞的转化试验 | 第37-38页 |
| ·T淋巴细胞亚群数量变化的检测 | 第38-39页 |
| ·CD4~+的检测 | 第38页 |
| ·CD8~+的检测 | 第38-39页 |
| 3 试验结果 | 第39-49页 |
| ·ConA-诱导试验鸭PBLs转化的效果 | 第39-42页 |
| ·肌肉注射组疫苗免疫后试验鸭PBLs转化的效果 | 第39页 |
| ·口服组疫苗免疫后试验鸭PBLs转化的效果 | 第39页 |
| ·皮下注射鸭瘟弱毒疫苗后试验鸭PBLs转化的效果 | 第39-42页 |
| ·外周血中T淋巴细胞的分析 | 第42-49页 |
| ·肌肉注射组疫苗免疫后试验鸭呜外周血中T淋巴细胞的分析 | 第42页 |
| ·口服组疫苗免疫后试验鸭外周血中T淋巴细胞的分析 | 第42页 |
| ·皮下注射鸭瘟弱毒疫苗后试验鸭外周血中T淋巴细胞的分析 | 第42-49页 |
| 4 结论与分析 | 第49-51页 |
| ·MTT法检测试验鸭外周血中T淋巴细胞的转化 | 第49-50页 |
| ·PBLs中CD4~+,CD8~+T淋巴细胞数的测定 | 第50-51页 |
| 第五章 DEV UL24基因疫苗免疫后诱导试验鸭IL-2和IFN-γ动态变化的研究 | 第51-63页 |
| 1 试验材料 | 第51-52页 |
| ·毒株、疫苗 | 第51页 |
| ·试验动物 | 第51页 |
| ·主要试验仪器 | 第51页 |
| ·主要试剂 | 第51-52页 |
| ·主要试剂的配置 | 第52页 |
| 2 试验方法 | 第52-53页 |
| ·动物免疫 | 第52页 |
| ·样品的采集 | 第52页 |
| ·双抗体ELISA法检测IL-2,IFN-γ的含量 | 第52-53页 |
| ·脾细胞培养 | 第52页 |
| ·血样标本制备 | 第52页 |
| ·检测方法 | 第52-53页 |
| ·统计学处理 | 第53页 |
| 3 试验结果 | 第53-62页 |
| ·皮下注射鸭瘟弱毒疫苗后IL-2,IFN-γ含量的测定 | 第53-54页 |
| ·肌肉注射组中试验鸭体内IL-2,IFN-γ含量的测定 | 第54页 |
| ·口服疫苗组中试验鸭体内IL-2,IFN-γ含量的测定 | 第54-62页 |
| 4 结论与分析 | 第62-63页 |
| ·试验鸭血液和脾中IL-2含量的变化 | 第62页 |
| ·试验鸭血液和脾中IFN-r含量的变化 | 第62-63页 |
| 第六章 DEV UL24基因疫苗诱导试验鸭体内CD3~+水平的变化研究 | 第63-74页 |
| 1 试验材料 | 第63-64页 |
| ·毒株、疫苗 | 第63页 |
| ·试验动物 | 第63页 |
| ·主要试验仪器 | 第63页 |
| ·主要试剂 | 第63-64页 |
| ·主要试剂的配置 | 第64页 |
| 2 试验方法 | 第64-68页 |
| ·动物免疫 | 第64页 |
| ·样品的采集 | 第64页 |
| ·间接免疫组化法对鸭体内CD3~+淋巴细胞水平的检测 | 第64-67页 |
| ·玻片和盖玻片的处理 | 第64页 |
| ·免疫组化检测材料的固定、包埋和切片 | 第64-65页 |
| ·免疫组化检测试验鸭CD3~+方法的建立及优化 | 第65-66页 |
| ·间接免疫组化法检测CD3~+淋巴细胞的程序 | 第66页 |
| ·试验结果的判定 | 第66-67页 |
| ·间接免疫荧光法对鸭体内CD3~+淋巴细胞水平的检测 | 第67-68页 |
| ·玻片和盖玻片的处理 | 第67页 |
| ·免疫荧光检测材料的固定、包埋和切片 | 第67页 |
| ·免疫荧光检测试验鸭CD3~+方法的建立及优化 | 第67页 |
| ·间接免疫荧光法检测CD3~+淋巴细胞的程序 | 第67-68页 |
| ·试验结果的判定 | 第68页 |
| 3 试验结果 | 第68-71页 |
| ·间接免疫组化检测组织中CD3~+淋巴细胞的含量及分布 | 第68-70页 |
| ·间接免疫组化检测组织中CD3~+淋巴细胞方法的优化 | 第68-69页 |
| ·间接免疫组化检测免疫后鸭体内CD3~+淋巴细胞的含量及分布 | 第69-70页 |
| ·间接免疫荧光检测组织中CD3~+淋巴细胞的含量及分布 | 第70-71页 |
| ·间接免疫荧光检测组织中CD3~+淋巴细胞方法的优化 | 第70页 |
| ·间接免疫荧光检测免疫后鸭体内CD3~+淋巴细胞的含量及分布 | 第70-71页 |
| 4 结论与分析 | 第71-74页 |
| ·鸭病毒性肠炎病毒UL24基因的研究 | 第71-72页 |
| ·CD3~+淋巴细胞在免疫器官和肠道中的分布 | 第72-74页 |
| 第三部分 小结 | 第74-75页 |
| 参考文献 | 第75-90页 |
| 附录 | 第90-101页 |
| 1 免疫组化组图 | 第90-95页 |
| 2 免疫荧光组图 | 第95-101页 |
| 致谢 | 第101页 |
