| 摘要 | 第1-4页 |
| ABSTRACT | 第4-10页 |
| 第1章 文献综述 | 第10-25页 |
| ·鹌鹑的羽色形成机制 | 第11-13页 |
| ·鹌鹑羽色遗传研究 | 第13-14页 |
| ·鹌鹑羽色类型 | 第13页 |
| ·朝鲜鹌鹑羽色的遗传 | 第13-14页 |
| ·几个主要候选基因与鹌鹑羽色变化 | 第14-21页 |
| ·ASIP 基因突变与鹌鹑羽色变化 | 第14-16页 |
| ·SLC45A2 基因突变与鹌鹑羽色变化 | 第16-17页 |
| ·MITF 与羽（肤）色的变化 | 第17-18页 |
| ·EDNRB2 突变与熊猫色 | 第18-19页 |
| ·TYRP 基因突变与鹌鹑羽色的变化 | 第19-20页 |
| ·MC1R 基因突变与鹌鹑羽色变化 | 第20-21页 |
| ·测试羽色基因的实验技术 | 第21-23页 |
| ·DNA 分子标记 | 第21-22页 |
| ·cDNA 的克隆和测序 | 第22页 |
| ·实时荧光定量 | 第22-23页 |
| ·生物学信息分析法 | 第23页 |
| ·研究的意义 | 第23-25页 |
| 第2章 试验材料与方法 | 第25-37页 |
| ·试验材料 | 第25-29页 |
| ·试验动物 | 第25页 |
| ·主要仪器设备与试剂 | 第25-26页 |
| ·引物设计 | 第26页 |
| ·引物溶液的配制和稀释 | 第26页 |
| ·DNA 溶液的稀释 | 第26-27页 |
| ·主要试剂和溶液配制 | 第27-29页 |
| ·试验方法 | 第29-37页 |
| ·DNA 和 RNA 提取方法 | 第29-31页 |
| ·琼脂糖凝胶电泳法检测 DNA | 第31页 |
| ·DNA 的纯化 | 第31-32页 |
| ·本试验涉及到的 PCR 技术 | 第32页 |
| ·反应程序与体系 | 第32-33页 |
| ·PCR 反应产物的电泳 | 第33-35页 |
| ·PCR 扩增产物的检测及测序分析 | 第35页 |
| ·PCR-RFLP 分析 | 第35页 |
| ·qRT-PCR 分析 | 第35页 |
| ·数据统计分析 | 第35-36页 |
| ·鹌鹑 PCR 产物的纯化、测序及 SNP 多态性位点筛选 | 第36页 |
| ·生物信息学分析 | 第36-37页 |
| 第3章 结果与分析 | 第37-47页 |
| ·朝鲜鹌鹑 MC1R 基因多态性的研究 | 第37-42页 |
| ·MC1R 基因第 1 外显子 212bp 处的 A/G 突变位点的分析 | 第37-40页 |
| ·MC1R 基因第 1 外显子 577bp 处的 C/T 突变位点的分析 | 第40-42页 |
| ·朝鲜鹌鹑 MC1R 实时定量分析 | 第42-44页 |
| ·朝鲜鹌鹑 MC1R 基因的生物学信息分析 | 第44-47页 |
| 第4章 讨论 | 第47-53页 |
| ·MC1R 基因多态性 | 第47-50页 |
| ·qRT–PCR 定量分析 | 第50-51页 |
| ·关于生物学信息 | 第51页 |
| ·关于 SSCP-PCR 和 A1u1-RFLP 方法 | 第51-53页 |
| 第5章 结论 | 第53-54页 |
| 参考文献 | 第54-60页 |
| 缩略语词汇表 | 第60-61页 |
| 致谢 | 第61-62页 |
| 攻读硕士学位期间的研究成果 | 第62页 |
