光周期途径菊花成花相关基因的筛选及其表达分析
| 中文摘要 | 第1-11页 |
| ABSTRACT | 第11-13页 |
| 1 引言 | 第13-34页 |
| ·高等植物成花研究 | 第13-16页 |
| ·高等植物花发育 | 第14-15页 |
| ·高等植物成花诱导 | 第15页 |
| ·高等植物成花诱导途径研究 | 第15-16页 |
| ·光周期途径诱导植物开花研究 | 第16-18页 |
| ·光周期反应类型 | 第16-17页 |
| ·光周期刺激的感受和发生作用的部位 | 第17页 |
| ·植物对光周期反应的敏感时期 | 第17-18页 |
| ·光周期途径诱导高等植物成花的分子调控机制 | 第18-24页 |
| ·光受体感知光信号 | 第18-19页 |
| ·生物节律钟系统 | 第19-22页 |
| ·水稻光周期调节成花机制的研究 | 第22-24页 |
| ·光周期对菊花开花的影响 | 第24-26页 |
| ·菊花花芽分化研究 | 第25页 |
| ·光周期对‘神马’花芽分化和开花的影响 | 第25-26页 |
| ·分子标记技术的原理及特点 | 第26-30页 |
| ·RFLP 标记 | 第26-27页 |
| ·RAPD 标记 | 第27页 |
| ·SCAR 标记 | 第27-28页 |
| ·SSR 标记 | 第28页 |
| ·ISSR 标记 | 第28-29页 |
| ·AFLP 标记 | 第29-30页 |
| ·CDNA-AFLP 技术及其应用 | 第30-32页 |
| ·CDNA-AFLP 技术的基本原理和实验流程 | 第30-31页 |
| ·CDNA-AFLP 技术的优点 | 第31页 |
| ·CDNA-AFLP 技术在植物表达分析上的应用 | 第31-32页 |
| ·本研究的目的意义 | 第32-34页 |
| 2 菊花 CDNA-AFLP 分析体系的建立 | 第34-48页 |
| ·试验材料 | 第34-35页 |
| ·材料 | 第34-35页 |
| ·主要仪器与试验试剂 | 第35页 |
| ·试验方法 | 第35-43页 |
| ·总 RNA 的提取及纯化 | 第35-38页 |
| ·双链 CDNA 的合成及纯化 | 第38-39页 |
| ·CDNA 酶切及连接体系的建立 | 第39-40页 |
| ·PCR 体系的建立 | 第40-42页 |
| ·PAGE 电泳 | 第42-43页 |
| ·银染显色体系的建立 | 第43页 |
| ·结果与分析 | 第43-45页 |
| ·总 RNA 的提取 | 第43-44页 |
| ·CDNA 酶切、连接和预扩增 | 第44-45页 |
| ·选择性扩增产物聚丙烯酰胺凝胶电泳结果分析与银染 | 第45页 |
| ·讨论 | 第45-48页 |
| ·菊花总 RNA 的提取和双链 CDNA 的合成 | 第45-46页 |
| ·CDNA-AFLP 试验体系 | 第46-48页 |
| 3 差异片段的分离与分析 | 第48-57页 |
| ·试验试剂 | 第48页 |
| ·试验方法 | 第48-50页 |
| ·总 RNA 的提取和双链 CDNA 的合成 | 第48页 |
| ·CDNA-AFLP 分析 | 第48页 |
| ·差异片段的回收及二次扩增 | 第48-49页 |
| ·差异片段的纯化 | 第49页 |
| ·目的片段与载体连接 | 第49页 |
| ·连接产物的转化 | 第49-50页 |
| ·PCR 鉴定阳性克隆及测序分析 | 第50页 |
| ·RT-PCR 分析 | 第50页 |
| ·结果与分析 | 第50-55页 |
| ·总 RNA 的提取和双链 CDNA 的合成 | 第50-51页 |
| ·CDNA-AFLP 分析 | 第51-52页 |
| ·TDFS 的序列分析 | 第52页 |
| ·TDFS 的功能分类 | 第52-54页 |
| ·成花相关基因片段的 RT-PCR 分析 | 第54-55页 |
| ·讨论 | 第55-57页 |
| ·光信号受体蛋白基因 | 第55-56页 |
| ·蛋白激酶和磷酸酶基因 | 第56页 |
| ·转录调控基因 | 第56页 |
| ·新陈代谢相关酶基因 | 第56-57页 |
| 4 结论 | 第57-58页 |
| 参考文献 | 第58-73页 |
| 致谢 | 第73-74页 |
| 攻读硕士学位期间发表论文情况 | 第74页 |
