| 摘要 | 第1-6页 |
| ABSTRACT | 第6-7页 |
| 引言 | 第7-19页 |
| 1.缺血性疾病与能量代谢紊乱 | 第7页 |
| 2.缺血性疾病与血管内皮保护 | 第7-8页 |
| 3.红花中有效单体成分羟基红花黄色素A的抗脑缺血研究 | 第8-13页 |
| 4.本研究的思路 | 第13-15页 |
| 参考文献 | 第15-19页 |
| 第一章 核磁共振检测HSYA对急性局灶性脑缺血大鼠脑皮层内源性小分子的影响 | 第19-24页 |
| 1.实验动物 | 第19页 |
| 2.实验材料 | 第19页 |
| 3.实验方法 | 第19-21页 |
| 4.实验结果 | 第21-22页 |
| 5.讨论 | 第22-24页 |
| 第二章 数控血管内皮细胞低氧损伤模型建立 | 第24-27页 |
| 1.实验材料 | 第24页 |
| 2.实验方法 | 第24-26页 |
| EAhy926细胞正常培养 | 第24-25页 |
| EAhy926细胞株低氧培养 | 第25-26页 |
| 3.讨论 | 第26-27页 |
| 第三章 HSYA对低氧状态下EAhy926细胞增殖的影响 | 第27-30页 |
| 1.实验材料 | 第27页 |
| 2.实验方法 | 第27页 |
| 3.实验结果 | 第27-28页 |
| 4.讨论 | 第28-30页 |
| 第四章 HSYA对低氧状态下EAhy926细胞中HIF-1α表达的影响 | 第30-43页 |
| 1.免疫组织化学检测常氧状态下HIF-1α表达变化 | 第30-32页 |
| 实验材料 | 第30页 |
| 实验方法 | 第30-31页 |
| 实验结果 | 第31-32页 |
| 2.RT-PCR检测缺氧状态下EAhy926细胞中HIF-1α转录水平变化 | 第32-36页 |
| 实验材料 | 第32页 |
| 实验方法 | 第32-35页 |
| 实验结果 | 第35-36页 |
| 3.Western-blot检测HIF-1α蛋白水平变化 | 第36-42页 |
| 实验材料 | 第36页 |
| 实验方法 | 第36-41页 |
| 实验结果 | 第41-42页 |
| 4.讨论 | 第42-43页 |
| 第五章 HSYA对低氧状态下EAhy926细胞中HIF-1α降解通路的影响 | 第43-52页 |
| 1.免疫组织化学检测p53、VHL表达变化 | 第43-47页 |
| 实验材料 | 第43页 |
| 实验方法 | 第43页 |
| 实验结果: | 第43-47页 |
| 2.RT-PCR检测p53、VHL转录水平变化 | 第47-49页 |
| 实验材料 | 第47页 |
| 实验方法 | 第47-48页 |
| 实验结果 | 第48-49页 |
| 3.Western-blot检测p53、VHL蛋白水平变化 | 第49-51页 |
| 实验材料 | 第49页 |
| 实验方法 | 第49页 |
| 实验结果 | 第49-51页 |
| 4.讨论 | 第51-52页 |
| 第六章 HSYA对低氧状态下EAhy926细胞中HIF-1α上游调节通路的影响 | 第52-57页 |
| 1.RT-PCR检测p53、VHL转录水平变化 | 第52-54页 |
| 2.Western-blot检测PI3K/Akt和PTEN蛋白水平变化 | 第54-56页 |
| 3.讨论 | 第56-57页 |
| 第七章 HSYA在低氧状态下EAhy926细胞内外含量检测 | 第57-61页 |
| 1.实验材料 | 第57页 |
| 2.实验方法 | 第57-59页 |
| 3.实验结果 | 第59页 |
| 4.讨论 | 第59-61页 |
| 综合讨论 | 第61-67页 |
| 参考文献 | 第67-70页 |
| 综述 | 第70-80页 |
| 附录 | 第80-82页 |
| 缩略词表 | 第80-82页 |
| 致谢 | 第82-83页 |
