中文摘要 | 第4-6页 |
abstract | 第6-8页 |
1 引言 | 第11-15页 |
2 材料与方法 | 第15-33页 |
2.1 实验材料 | 第15-20页 |
2.1.1 实验动物 | 第15页 |
2.1.2 试剂与耗材 | 第15-19页 |
2.1.3 主要仪器和设备 | 第19-20页 |
2.2 实验方法 | 第20-33页 |
2.2.1 糖尿病大鼠模型的建立以及药物使用 | 第20-21页 |
2.2.2 胰岛素耐受测试(Intraperitoneal Insulin Tolerance Test, IPITT) | 第21页 |
2.2.3 RNA提取与RT-PCR | 第21-22页 |
2.2.4 Real-time PCR分析 | 第22-23页 |
2.2.5 Long Amplicon PCR (LA-PCR) | 第23-26页 |
2.2.6 Western blot | 第26-28页 |
2.2.7 免疫荧光(IF) | 第28-30页 |
2.2.8 Morris水迷宫(Morris Water Maze, MWM) | 第30-31页 |
2.2.9 T迷宫(T-maze,TM) | 第31-32页 |
2.2.10 Rota-rod | 第32页 |
2.2.11 统计分析 | 第32-33页 |
3 实验结果 | 第33-46页 |
3.1 2型糖尿病大鼠模型的建立以及验证 | 第33-34页 |
3.2 2型糖尿病大鼠的运动功能和疼痛行为没有明显改变 | 第34-35页 |
3.3 T2DM大鼠的记忆功能发生损伤 | 第35-37页 |
3.3.1 T2DM大鼠在T迷宫中的表现 | 第35-36页 |
3.3.2 T2DM大鼠在Morris水迷宫中的表现 | 第36-37页 |
3.4 T2DM大鼠海马区小胶质细胞中P2X4R的表达下调 | 第37-39页 |
3.5 T2DM大鼠海马区激活的小胶质细胞的数量增加 | 第39-41页 |
3.6 米诺环素抑制激活的小胶质细胞并反转MORRIS水迷宫行为 | 第41-44页 |
3.7 DNA DAMAGE导致P2X4R基因的表达减少 | 第44-46页 |
4 结论 | 第46-47页 |
5 讨论 | 第47-51页 |
总结和展望 | 第51-52页 |
参考文献 | 第52-56页 |
综述 | 第56-90页 |
综述参考文献 | 第72-90页 |
攻读博士研究生期间的科研成果 | 第90-91页 |
本文中使用的缩略词表 | 第91-92页 |
致谢 | 第92-94页 |