| 摘要 | 第1-12页 |
| ABSTRACT | 第12-17页 |
| 符号及缩略语的说明 | 第17-18页 |
| 第一篇 文献综述 | 第18-50页 |
| 第一章 弓形虫感染对宿主行为影响的研究概况 | 第18-39页 |
| 1 弓形虫与弓形虫病 | 第18-24页 |
| ·弓形虫病原学 | 第18-20页 |
| ·流行病学概况 | 第20-21页 |
| ·弓形虫病的临床表现 | 第21-24页 |
| 2 弓形虫感染对脑部的影响 | 第24-28页 |
| ·对大脑的影响 | 第24-26页 |
| ·影响感染结果的因素 | 第26-28页 |
| 3 弓形虫感染与宿主的行为改变 | 第28-33页 |
| ·动物行为和弓形虫感染 | 第28-29页 |
| ·人类行为与弓形虫感染 | 第29-31页 |
| ·人体神经精神疾病与弓形虫感染 | 第31-33页 |
| 4 可能的机制 | 第33-38页 |
| ·直接神经调节,损伤或死亡 | 第33页 |
| ·下丘脑-垂体-肾上腺轴的干扰 | 第33-34页 |
| ·色氨酸代谢 | 第34-35页 |
| ·神经递质及其受体异常 | 第35-36页 |
| ·弓形虫病的免疫 | 第36-38页 |
| 5 结束语 | 第38-39页 |
| 参考文献 | 第39-50页 |
| 第二篇 实验研究 | 第50-150页 |
| 第二章 弓形虫慢性感染大鼠模型的建立 | 第50-62页 |
| 1 材料与方法 | 第51-53页 |
| ·实验动物与分组 | 第51-52页 |
| ·实验方法 | 第52页 |
| ·观察内容 | 第52页 |
| ·双重PCR检测方法 | 第52-53页 |
| 2 结果 | 第53-56页 |
| ·大鼠生存情况 | 第53页 |
| ·病原学检测、基因检测和小鼠盲传结果 | 第53-56页 |
| 3 讨论 | 第56-59页 |
| 参考文献 | 第59-62页 |
| 第三章 弓形虫慢性感染对大鼠学习记忆能力及其海马细胞因子和抗氧化水平的影响 | 第62-76页 |
| 1 材料与方法 | 第64-66页 |
| ·实验动物与分组 | 第64页 |
| ·试剂及实验设备 | 第64页 |
| ·被动回避实验 | 第64-65页 |
| ·Morris水迷宫检测 | 第65页 |
| ·海马组织的细胞因子测定 | 第65页 |
| ·大鼠海马SOD活性与MDA含量检测 | 第65页 |
| ·NADPH-d组化染色 | 第65-66页 |
| ·电镜标本的制作及大鼠海马超微结构的观察 | 第66页 |
| ·统计方法 | 第66页 |
| 2 结果 | 第66-69页 |
| ·弓形虫感染对大鼠行为的影响 | 第67页 |
| ·Morris水迷宫试验成绩 | 第67-68页 |
| ·弓形虫感染对大鼠海马组织细胞因子水平的影响 | 第68页 |
| ·大鼠皮层NADPH-d组化反应结果 | 第68-69页 |
| ·海马SOD活性与MDA含量检测测定结果 | 第69页 |
| ·大鼠海马超微结构的影响 | 第69页 |
| 3 讨论 | 第69-73页 |
| 参考文献 | 第73-76页 |
| 第四章 弓形虫慢性感染对大鼠海马BDNF和NMDA表达的影响 | 第76-86页 |
| 1 材料与方法 | 第78-79页 |
| ·实验动物与分组 | 第78页 |
| ·实验材料 | 第78页 |
| ·切片制备和免疫组化 | 第78页 |
| ·BDNF检测 | 第78-79页 |
| ·NMDA检测 | 第79页 |
| ·图像处理 | 第79页 |
| ·统计学处理 | 第79页 |
| 2 结果 | 第79-80页 |
| ·BDNF的表达 | 第79页 |
| ·海马BDNF mRNA的表达 | 第79页 |
| ·NMDA亚单位NR2A、NR2B表达 | 第79-80页 |
| ·图像处理结果 | 第80页 |
| 3 讨论 | 第80-83页 |
| 参考文献 | 第83-86页 |
| 第五章 慢性弓形虫感染对大鼠物体识别能力和脑单胺类神经递质含量的影响 | 第86-100页 |
| 1 材料和方法 | 第88-90页 |
| ·实验动物与分组 | 第88页 |
| ·弓形虫速殖子的制备和纯化 | 第88页 |
| ·实验试剂仪器和样本处理 | 第88页 |
| ·物体识别试验 | 第88-89页 |
| ·Morris水迷宫测试 | 第89-90页 |
| ·单胺类递质含量的测定 | 第90页 |
| ·统计学处理 | 第90页 |
| 2 结果 | 第90-93页 |
| ·物体识别能力 | 第90-91页 |
| ·Morris水迷宫试验成绩 | 第91页 |
| ·海马单胺类神经递质的含量 | 第91-92页 |
| ·脑内单胺类神经递质的含量 | 第92-93页 |
| 3 讨论 | 第93-96页 |
| 参考文献 | 第96-100页 |
| 第六章 弓形虫感染对大鼠脑组织神经丝mRNA表达和细胞免疫水平的影响 | 第100-108页 |
| 1 材料与方法 | 第101-103页 |
| ·实验动物与分组 | 第101-102页 |
| ·大鼠大脑组织中NF的检测 | 第102页 |
| ·外周血T细胞亚群的流式细胞术检测 | 第102页 |
| ·血清γ干扰素(IFN-γ)、肿瘤坏死因子α(TNF-α)、白细胞介素4(IL-4)的检测 | 第102页 |
| ·统计分析 | 第102-103页 |
| 2 结果 | 第103-104页 |
| ·大脑组织NF mRNA水平变化 | 第103页 |
| ·外周血T细胞亚群变化 | 第103页 |
| ·血清IFN-γ、TNF-α、IL-4水平 | 第103-104页 |
| 3 讨论 | 第104-106页 |
| 参考文献 | 第106-108页 |
| 第七章 慢性弓形虫感染对大鼠海马神经元凋亡、周期及其caspase-3与Cyt c蛋白表 达影响的研究 | 第108-118页 |
| 1 材料与方法 | 第109-111页 |
| ·弓形虫速殖子的制备和纯化 | 第109页 |
| ·实验动物与分组 | 第109-110页 |
| ·材料 | 第110页 |
| ·海马神经元细胞凋亡检测 | 第110页 |
| ·海马神经元细胞线粒体膜电位检测 | 第110页 |
| ·海马神经元细胞caspase-3和Cyt c蛋白表达 | 第110-111页 |
| ·统计学处理 | 第111页 |
| 2 结果 | 第111-112页 |
| ·大鼠海马神经元细胞周期变化 | 第111页 |
| ·大鼠海马神经元细胞凋亡及线粒体膜电位变化 | 第111页 |
| ·大鼠海马神经元caspase-3和Cyt c蛋白表达的变化 | 第111-112页 |
| 3 讨论 | 第112-115页 |
| 参考文献 | 第115-118页 |
| 第八章 慢性弓形虫感染与正常大鼠海马的比较蛋白质组学研究 | 第118-138页 |
| 1 材料与方法 | 第120-122页 |
| ·试剂、仪器和实验动物 | 第120页 |
| ·实验方法 | 第120-122页 |
| 2 结果 | 第122-124页 |
| ·弓形虫慢性感染组和正常对照组大鼠海马蛋白质双向电泳图谱及凝胶图像差异分析 | 第122-123页 |
| ·差异蛋白点的质谱鉴定 | 第123-124页 |
| 3 讨论 | 第124-135页 |
| 参考文献 | 第135-138页 |
| 第九章 慢性弓形虫感染大鼠脊髓组织蛋白质的双向电泳分析和质谱鉴定 | 第138-150页 |
| 1 材料与方法 | 第139-142页 |
| ·仪器和试剂 | 第139-140页 |
| ·方法 | 第140-142页 |
| 2 结果 | 第142-143页 |
| ·成功建立脊髓蛋白质组双向电泳图谱 | 第142页 |
| ·差异蛋白点的质谱鉴定 | 第142-143页 |
| 3 讨论 | 第143-148页 |
| 参考文献 | 第148-150页 |
| 全文结论 | 第150-152页 |
| 攻读博士研究生学位期间发表的论文 | 第152-154页 |
| 致谢 | 第154页 |
