| 摘要 | 第3-6页 |
| abstract | 第6-9页 |
| 中英文缩略词表 | 第13-14页 |
| 第1章 引言 | 第14-18页 |
| 1.1 科学问题及研究目的 | 第14-15页 |
| 1.2 选题背景及意义 | 第15-16页 |
| 1.3 研究方法 | 第16-18页 |
| 第2章 对象、材料与方法 | 第18-34页 |
| 2.1 研究对象 | 第18页 |
| 2.2 实验试剂与耗材 | 第18-21页 |
| 2.2.1 细胞培养试剂 | 第18页 |
| 2.2.2 药物及其制备与保存 | 第18页 |
| 2.2.3 主要生化试剂 | 第18-19页 |
| 2.2.4 主要实验耗材 | 第19-20页 |
| 2.2.5 抗体及其来源 | 第20页 |
| 2.2.6 主要仪器和设备 | 第20-21页 |
| 2.3 实验方法 | 第21-33页 |
| 2.3.1 激光照射参数的计算 | 第21-22页 |
| 2.3.2 HUVEC细胞株复苏 | 第22页 |
| 2.3.3 HUVEC细胞培养 | 第22-23页 |
| 2.3.4 HUVEC细胞传代 | 第23页 |
| 2.3.5 HUVEC细胞冻存 | 第23-24页 |
| 2.3.6 细胞计数 | 第24页 |
| 2.3.7 低能量激光照射前处理 | 第24页 |
| 2.3.8 最佳照射方式的确定 | 第24-26页 |
| 2.3.9 CCK8实验方法 | 第26页 |
| 2.3.10 Edu细胞增殖法方法 | 第26-27页 |
| 2.3.11 划痕实验方法 | 第27-28页 |
| 2.3.12 内皮细胞管腔形成实验方法 | 第28页 |
| 2.3.13 细胞样本蛋白提取及浓度测定方法 | 第28-29页 |
| 2.3.14 WesternBlot实验方法 | 第29-31页 |
| 2.3.15 酶联免疫吸附试验(ELISA)实验方法 | 第31-33页 |
| 2.4 统计学分析 | 第33-34页 |
| 第3章 结果 | 第34-52页 |
| 3.1 低能量激光最佳照射方式 | 第34-37页 |
| 3.1.1 单次照射不同剂量对HUVEC增殖的影响 | 第34-35页 |
| 3.1.2 不同的照射间隔时间对HUVEC增殖的影响 | 第35页 |
| 3.1.3 不同功率密度对HUVEC增殖的影响 | 第35-37页 |
| 3.1.4 累计照射次数对HUVEC增殖的影响 | 第37页 |
| 3.2 低能量激光对HUVEC增殖能力的影响 | 第37-40页 |
| 3.2.1 HUVEC形态学观察 | 第37-38页 |
| 3.2.2 CCK8法检测HUVEC增殖情况 | 第38-39页 |
| 3.2.3 EdU细胞增殖检测法检测HUVEC增殖活力 | 第39-40页 |
| 3.3 低能量激光对HUVEC迁移能力的影响 | 第40-42页 |
| 3.4 低能量激光对HUVEC管样结构形成能力的影响 | 第42-43页 |
| 3.5 低能量激光对HUVEC内VEGFA、eNOS和HIF-1α蛋白表达水平的影响 | 第43-45页 |
| 3.6 低能量激光对HUVEC中PI3K/Akt信号通路的影响 | 第45-46页 |
| 3.7 低能量激光促HUVEC增殖、迁移和管样结构形成作用与其激活PI3K信号通路相关 | 第46-52页 |
| 3.7.1 低能量激光促HUVEC增殖作用与其激活PI3K信号通路相关 | 第46-47页 |
| 3.7.2 低能量激光促HUVEC迁移作用与其激活PI3K信号通路相关 | 第47-49页 |
| 3.7.3 低能量激光促HUVEC管样结构的形成与PI3K信号通路的活化无关 | 第49-50页 |
| 3.7.4 低能量激光以PI3K信号通路依赖性方式上调HUVEC中HIF-1α、eNOS和VEGFA的表达水平 | 第50-52页 |
| 第4章 讨论 | 第52-58页 |
| 4.1 低能量激光中光参数对HUVEC增殖的影响 | 第53-55页 |
| 4.2 低能量激光对HUVEC增殖、迁移和管样结构形成的影响 | 第55-56页 |
| 4.3 低能量激光通过PI3K信号通路依赖性方式上调HUVEC中HIF-1α、eNOS和VEGFA的表达及分泌 | 第56-58页 |
| 第5章 结论与展望 | 第58-60页 |
| 5.1 结论 | 第58页 |
| 5.2 展望 | 第58-60页 |
| 致谢 | 第60-61页 |
| 参考文献 | 第61-65页 |
| 攻读学位期间的研究成果 | 第65-66页 |
| 综述 | 第66-77页 |
| 参考文献 | 第74-77页 |
