| 个人简历 | 第3-7页 |
| 英文缩写表 | 第7-8页 |
| 摘要 | 第8-11页 |
| ABSTRACT | 第11-14页 |
| 前言 | 第15-22页 |
| 1 实验材料 | 第22-27页 |
| 1.1 实验动物 | 第22页 |
| 1.2 实验仪器 | 第22-24页 |
| 1.3 实验试剂 | 第24-26页 |
| 1.4 主要溶液的配制 | 第26-27页 |
| 2 实验方法 | 第27-33页 |
| 2.1 原代海马神经元的分离和培养 | 第27-29页 |
| 2.2 MAP-2和GFAP免疫细胞化学染色 | 第29页 |
| 2.3 脂质体介导CAG-GFP转染神经元细胞 | 第29页 |
| 2.4 SYP和 PSD-95 免疫细胞化学染色 | 第29-30页 |
| 2.5 rGO@Pd复合纳米材料与rGO纳米材料溶液的制备与表征 | 第30页 |
| 2.6 细胞活性检测 | 第30-32页 |
| 2.7 β-Tubulin和 TRITC-Phalloidin细胞免疫荧光染色 | 第32页 |
| 2.8 β-Tubulin细胞免疫荧光染色 | 第32-33页 |
| 2.9 图像分析和统计学处理 | 第33页 |
| 3 实验结果 | 第33-47页 |
| 3.1 原代培养小鼠海马神经元的生长情况变化 | 第33-35页 |
| 3.2 小鼠海马神经元的纯度鉴定 | 第35-36页 |
| 3.3 海马神经元的树突棘和突触形态 | 第36-37页 |
| 3.4 还原氧化石墨烯和负载钯还原氧化石墨烯复合纳米材料的表征 | 第37-39页 |
| 3.5 海马神经元在纳米材料表面的生长情况 | 第39-40页 |
| 3.6 通过CCK-8法检测不同组别细胞的活性 | 第40-41页 |
| 3.7 Calcein-AM/PI染色法检测不同组别细胞的活性 | 第41-43页 |
| 3.8 负载钯还原氧化石墨烯复合纳米材料能促进海马神经元生长锥的生长 | 第43-44页 |
| 3.9 负载钯还原氧化石墨烯复合纳米材料能提高海马神经元突起长度 | 第44-47页 |
| 4 讨论 | 第47-56页 |
| 4.1 取材小鼠的年龄选择 | 第47-48页 |
| 4.2 消化酶的选择 | 第48页 |
| 4.3 神经元培养基的选择 | 第48-49页 |
| 4.4 其它因素的影响 | 第49-50页 |
| 4.5 神经元细胞纯度的鉴定 | 第50-51页 |
| 4.6 海马神经元的成熟度检测 | 第51页 |
| 4.7 负载钯还原氧化石墨烯纳米复合材料(rGO@Pd)的生物安全性 | 第51-52页 |
| 4.8 负载钯还原氧化石墨烯纳米复合材料(rGO@Pd)对原代海马神经元发育的影响 | 第52-54页 |
| 4.9后期需要进一步完善的实验 | 第54-56页 |
| 5 小结 | 第56-58页 |
| 参考文献 | 第58-67页 |
| 综述 | 第67-80页 |
| 参考文献 | 第74-80页 |
| 致谢 | 第80-82页 |
| 硕士期间发表的论文 | 第82页 |
