| 摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5-7页 |
| 第一章 绪论 | 第13-24页 |
| 1.1 引言 | 第13页 |
| 1.2 环境激素 | 第13-14页 |
| 1.3 含有酚类环境激素的废水治理 | 第14-17页 |
| 1.3.1 物理吸附 | 第14-16页 |
| 1.3.2 化学氧化法 | 第16-17页 |
| 1.3.3 微生物降解法 | 第17页 |
| 1.4 辣根过氧化物酶 | 第17-21页 |
| 1.4.1 辣根过氧化物酶的空间结构及催化机理 | 第18-19页 |
| 1.4.2 辣根过氧化物酶的应用 | 第19-20页 |
| 1.4.3 辣根过氧化物酶的分子包埋法 | 第20-21页 |
| 1.5 国内外的研究进展 | 第21-22页 |
| 1.5.1 辣根过氧化物酶催化降解环境雌激素 | 第21页 |
| 1.5.2 分子包埋技术的应用 | 第21-22页 |
| 1.6 本工作的选题意义及工作内容 | 第22-24页 |
| 第二章 两性离子聚合物包埋辣根过氧化物酶 | 第24-42页 |
| 2.1 引言 | 第24页 |
| 2.2 实验原理 | 第24-27页 |
| 2.2.1 分子包埋法制备HRP纳米凝胶的化学原理 | 第24-25页 |
| 2.2.2 蛋白接枝度的检测原理 | 第25-26页 |
| 2.2.3 蛋白酶活性的检测原理 | 第26-27页 |
| 2.3 实验仪器与试剂 | 第27-28页 |
| 2.4 实验方法 | 第28-29页 |
| 2.4.1 HRP-NAS大单体的合成 | 第28页 |
| 2.4.2 纳米凝胶酶的合成 | 第28-29页 |
| 2.5 产物表征 | 第29-31页 |
| 2.5.1 利用TNBS法测定HRP-NAS上的双键数目 | 第29页 |
| 2.5.2 纳米凝胶酶的粒径检测 | 第29-30页 |
| 2.5.3 纳米凝胶酶的催化活性检测 | 第30页 |
| 2.5.4 纳米凝胶酶的热稳定性检测 | 第30页 |
| 2.5.5 HRP-nanogel的米氏常数测定 | 第30页 |
| 2.5.6 HRP-nanogel的zeta电位测定 | 第30-31页 |
| 2.6 结果与讨论 | 第31-40页 |
| 2.6.1 利用TNBS法倒推辣根过氧化物酶表面双键的数目 | 第31-34页 |
| 2.6.2 纳米凝胶酶的粒径检测 | 第34页 |
| 2.6.3 纳米凝胶酶的催化活性浓度检测 | 第34-35页 |
| 2.6.4 纳米凝胶酶的热稳定性检测 | 第35-36页 |
| 2.6.5 HRP-nanogel的米氏常数测定 | 第36-40页 |
| 2.6.6 HRP-nanogel的Zeta电位测定 | 第40页 |
| 2.7 本章小结 | 第40-42页 |
| 第三章 纳米凝胶酶对酚类环境雌激素去除的研究 | 第42-59页 |
| 3.1 引言 | 第42页 |
| 3.2 实验仪器与试剂 | 第42-43页 |
| 3.3 纳米凝胶酶对苯酚去除的研究 | 第43-48页 |
| 3.3.1 实验原理 | 第43页 |
| 3.3.2 实验方法 | 第43-45页 |
| 3.3.2.1 过氧化氢的含量标定——高锰酸钾法 | 第43-44页 |
| 3.3.2.2 苯酚标准曲线——4-氨基安替比林法 | 第44页 |
| 3.3.2.3 HRP-nanogel、HRP去除phenol效果对比 | 第44页 |
| 3.3.2.4 pH值对HRP-nanogel去除苯酚的影响 | 第44-45页 |
| 3.3.2.5 不同H2O2浓度对HRP-nanogel去除苯酚的影响 | 第45页 |
| 3.3.3 实验结果 | 第45-48页 |
| 3.3.3.1 苯酚标准曲线的绘制 | 第45页 |
| 3.3.3.2 HRP-nanogel与HRP去除phenol的效果差异 | 第45-46页 |
| 3.3.3.3 探究不同pH值对HRP-nanogel去除phenol的影响 | 第46-47页 |
| 3.3.3.4 探究H2O2浓度对HRP-nanogel去除苯酚的影响 | 第47-48页 |
| 3.4 对其它几种酚类环境雌激素的去除研究 | 第48-57页 |
| 3.4.1 实验原理 | 第48-50页 |
| 3.4.2 实验方法 | 第50-51页 |
| 3.4.2.1 酚类化合物标准曲线——4-氨基替比林法 | 第50-51页 |
| 3.4.2.2 纳米凝胶酶对酚类化合物去除的效果 | 第51页 |
| 3.4.3 实验结果 | 第51-57页 |
| 3.4.3.1 酚类化合物标准曲线 | 第51-53页 |
| 3.4.3.2 纳米凝胶酶对双酚A去除的效果 | 第53-54页 |
| 3.4.3.3 纳米凝胶酶对4-氯苯酚去除的效果 | 第54-55页 |
| 3.4.3.4 纳米凝胶酶对2,4-二氯苯酚去除的效果 | 第55-56页 |
| 3.4.3.5 纳米凝胶酶对4-甲氧基苯酚去除的效果 | 第56-57页 |
| 3.5 本章小结 | 第57-59页 |
| 第四章 基于HRP羧基修饰进行分子包埋的制备与表征 | 第59-72页 |
| 4.1 引言 | 第59-60页 |
| 4.2 实验原理 | 第60-63页 |
| 4.2.1 羧基修饰纳米凝胶酶的合成原理 | 第60-62页 |
| 4.2.2 检测蛋白活性原理 | 第62-63页 |
| 4.3 实验仪器与试剂 | 第63-64页 |
| 4.4 实验方法 | 第64-65页 |
| 4.4.1 探究不同量的APMA对HRP-APMA-GEL的合成影响 | 第64页 |
| 4.4.2 HRP-APMA与HRP-AA的合成 | 第64-65页 |
| 4.4.3 HRP-APMA-GEL与HRP-AA-GEL的合成 | 第65页 |
| 4.5 产物表征 | 第65-67页 |
| 4.5.1 HRP-APMA和HRP-AA的飞行质谱表征 | 第65页 |
| 4.5.2 不同量的APMA对HRP-APMA-GEL的热稳定性影响 | 第65页 |
| 4.5.3 HRP-APMA-GEL和HRP@CBAA的粒径检测 | 第65-66页 |
| 4.5.4 HRP-APMA-GEL缓冲溶液体系的热稳定性研究 | 第66页 |
| 4.5.5 HRP-APMA-GEL对靛蓝胭脂红进行去除效果的研究 | 第66-67页 |
| 4.6 结果与讨论 | 第67-70页 |
| 4.6.1 HRP-APMA和HRP-AA的飞行质谱表征 | 第67页 |
| 4.6.2 不同量的APMA对HRP-APMA-GEL的热稳定性影响 | 第67-68页 |
| 4.6.3 HRP-APMA-GEL和HRP@CBAA的粒径检测 | 第68-69页 |
| 4.6.4 HRP-APMA-CB缓冲溶液体系的研究 | 第69页 |
| 4.6.5 HRP-APMA-GEL对靛蓝胭脂红进行去除效果的研究 | 第69-70页 |
| 4.7 本章小结 | 第70-72页 |
| 第五章 工作总结及展望 | 第72-74页 |
| 5.1 工作总结 | 第72-73页 |
| 5.2 展望 | 第73-74页 |
| 参考文献 | 第74-80页 |
| 致谢 | 第80-81页 |
| 攻读硕士期间的学术成果 | 第81页 |
