| 摘要 | 第3-4页 |
| Abstract | 第4页 |
| 缩写词表 | 第8-9页 |
| 第一章 绪论 | 第9-22页 |
| 1.1 研究背景 | 第9-12页 |
| 1.1.1 不育症 | 第9-10页 |
| 1.1.2 精子发生 | 第10-11页 |
| 1.1.3 雄性早期生殖细胞 | 第11-12页 |
| 1.2 文献综述 | 第12-20页 |
| 1.2.1 精子体外发生的研究现况 | 第12-17页 |
| 1.2.2 精子体外发生相关基因的研究 | 第17-20页 |
| 1.3 本课题的研究意义 | 第20-21页 |
| 1.4 本课题的研究内容 | 第21-22页 |
| 第二章 大鼠早期生殖细胞减数分裂前检测 | 第22-28页 |
| 2.1 实验材料 | 第22-23页 |
| 2.1.1 实验动物和细胞来源 | 第22页 |
| 2.1.2 主要仪器与设备 | 第22页 |
| 2.1.3 主要试剂与耗材 | 第22-23页 |
| 2.2 实验方法 | 第23-25页 |
| 2.2.1 雄性大鼠早期睾丸组织冰冻切片荧光染色 | 第23-24页 |
| 2.2.2 大鼠早期生殖细胞体外培养 | 第24页 |
| 2.2.3 免疫荧光检测标记物 | 第24-25页 |
| 2.3 实验结果 | 第25-27页 |
| 2.3.1 雄性大鼠早期睾丸组织内生殖细胞 | 第25-26页 |
| 2.3.2 雄性大鼠早期生殖细胞在体外增殖、分化 | 第26页 |
| 2.3.3 培养基中有精原干细胞,细胞状态及增殖情况良好 | 第26-27页 |
| 2.4 本章小结 | 第27-28页 |
| 第三章 大鼠早期生殖细胞体外减数分裂检测 | 第28-36页 |
| 3.1 实验材料 | 第28-30页 |
| 3.1.1 实验细胞 | 第28页 |
| 3.1.2 主要仪器与设备 | 第28页 |
| 3.1.3 主要试剂与耗材 | 第28-30页 |
| 3.2 实验方法 | 第30-31页 |
| 3.2.1 qRT-PCR检测STRA8、DMC1、KIT、SCP3、ACROSIN基因 | 第30-31页 |
| 3.2.2 免疫荧光检测STRA8、SCP3、DMC1、γH2AX及减数分裂时期染色体变化 | 第31页 |
| 3.3 数据统计 | 第31页 |
| 3.4 实验结果 | 第31-35页 |
| 3.4.1 细胞有减数分裂过程,产生的细胞有顶体结构 | 第31-32页 |
| 3.4.2 细胞有减数分裂过程 | 第32-33页 |
| 3.4.3 减数分裂染色体联会、交叉互换的发生 | 第33-35页 |
| 3.5 本章小结 | 第35-36页 |
| 第四章 单倍体细胞及形态检测 | 第36-42页 |
| 4.1 实验材料 | 第36-37页 |
| 4.1.1 细胞来源 | 第36页 |
| 4.1.2 主要仪器与设备 | 第36页 |
| 4.1.3 主要试剂与耗材 | 第36-37页 |
| 4.2 实验方法 | 第37-39页 |
| 4.2.1 AFAF、GATA4荧光染色 | 第37-38页 |
| 4.2.2 流式检测单倍体细胞 | 第38页 |
| 4.2.3 单倍体精子细胞PNA染色 | 第38-39页 |
| 4.3 统计学处理 | 第39页 |
| 4.4 实验结果 | 第39-41页 |
| 4.4.1 有圆形精子样细胞生成 | 第39-40页 |
| 4.4.2 产生单倍体细胞 | 第40页 |
| 4.4.3 产生的单倍体细胞有完整的顶体结构 | 第40-41页 |
| 4.5 本章小结 | 第41-42页 |
| 第五章 分析与讨论 | 第42-44页 |
| 结论与展望 | 第44-45页 |
| 结论 | 第44页 |
| 展望 | 第44-45页 |
| 致谢 | 第45-47页 |
| 参考文献 | 第47-55页 |
| 附录：作者在攻读硕士学位期间发表的论文 | 第55页 |
