| 摘要 | 第4-5页 |
| abstract | 第5-6页 |
| 缩写词 | 第7-10页 |
| 1 引言 | 第10-14页 |
| 1.1 玉米大斑病及发生现状 | 第10页 |
| 1.2 真菌的有性发育 | 第10-12页 |
| 1.2.1 子囊菌的有性生殖 | 第10-11页 |
| 1.2.2 玉米大斑病菌的有性生殖 | 第11-12页 |
| 1.3 MAT基因与有性生殖的关系 | 第12-13页 |
| 1.4 研究意义和目的 | 第13-14页 |
| 2 材料和方法 | 第14-28页 |
| 2.1 材料及配方 | 第14-16页 |
| 2.1.1 试验材料 | 第14页 |
| 2.1.2 溶液和药品配方 | 第14-15页 |
| 2.1.3 培养基配方 | 第15页 |
| 2.1.4 试验仪器 | 第15-16页 |
| 2.2 病菌的分离纯化及保存 | 第16页 |
| 2.3 病菌交配型组成鉴定 | 第16-17页 |
| 2.4 玉米大斑病菌有性生殖的影响因素分析 | 第17-18页 |
| 2.4.1 不同交配型菌株有性生殖能力分析 | 第17页 |
| 2.4.2 子囊孢子成熟的影响因素分析 | 第17-18页 |
| 2.5 转录因子StMAT1-1自激活活性检测 | 第18-20页 |
| 2.5.1 StMAT1-1基因的克隆 | 第18-19页 |
| 2.5.2 StMAT1-1基因自激活活性检测 | 第19-20页 |
| 2.6 StMAT1-1基因缺失菌株的创制 | 第20-23页 |
| 2.6.1 StMAT1-1基因同源片段克隆 | 第20-21页 |
| 2.6.2 StMAT1-1基因敲除载体的构建 | 第21-23页 |
| 2.7 StMAT1-1基因敲除突变体的创制 | 第23-26页 |
| 2.7.1 PEG介导的原生质体转化 | 第23页 |
| 2.7.2 农杆菌介导的原生质体转化 | 第23-24页 |
| 2.7.3 ?StMAT1-1突变体的验证 | 第24-26页 |
| 2.8 突变体?StMAT1-1的分析 | 第26-28页 |
| 2.8.1 ?StMAT1-1的形态观察 | 第26页 |
| 2.8.2 ?StMAT1-1的无性繁殖能力分析 | 第26页 |
| 2.8.3 ?StMAT1-1的有性繁殖能力分析 | 第26页 |
| 2.8.4 有性生殖相关基因的表达分析 | 第26-28页 |
| 3 结果与分析 | 第28-48页 |
| 3.1 玉米大斑病菌的交配型组成 | 第28-29页 |
| 3.2 玉米大斑病菌有性态产生的最佳条件 | 第29-35页 |
| 3.2.1 不同交配型菌株的有性生殖能力 | 第29-30页 |
| 3.2.2 玉米大斑病菌有性繁殖过程 | 第30-31页 |
| 3.2.3 子囊孢子成熟的影响因素 | 第31-35页 |
| 3.3 StMAT1-1基因的自激活活性 | 第35-37页 |
| 3.3.1 StMAT1-1基因cDNA全长的获得 | 第35-36页 |
| 3.3.2 自激活诱饵载体pGBKT7-StMAT1- | 第36页 |
| 3.3.3 pGBKT7-StMAT1-1的自激活检测 | 第36-37页 |
| 3.4 玉米大斑病菌StMAT1-1突变体的获得 | 第37-41页 |
| 3.4.1 PEG介导的StMAT1-1敲除载体的获得 | 第37-38页 |
| 3.4.2 农杆菌介导的StMAT1-1敲除载体的获得 | 第38-39页 |
| 3.4.3 StMAT1-1突变体的获得 | 第39-40页 |
| 3.4.4 StMAT1-1突变体的表达量 | 第40-41页 |
| 3.5 StMAT1-1突变体的特性 | 第41-48页 |
| 3.5.1 不同培养基上突变体的菌落形态 | 第41-43页 |
| 3.5.2 突变体的营养生长及无性繁殖能力 | 第43-44页 |
| 3.5.3 突变体的有性生殖能力 | 第44-45页 |
| 3.5.4 生殖相关基因的表达量分析 | 第45-48页 |
| 4 讨论 | 第48-51页 |
| 4.1 环境条件与真菌有性生殖的关系 | 第48-49页 |
| 4.2 真菌交配型基因MAT的结构和功能 | 第49页 |
| 4.3 交配型基因对生殖相关基因的调控作用 | 第49-51页 |
| 5 结论 | 第51-52页 |
| 参考文献 | 第52-56页 |
| 在读期间发表的学术论文 | 第56-57页 |
| 作者简历 | 第57-59页 |
| 致谢 | 第59-60页 |
| 附件 | 第60-61页 |
| 详细摘要 | 第61-62页 |
