| 摘要 | 第4-6页 |
| abstract | 第6-7页 |
| 第一部分 文献综述 | 第12-17页 |
| 1 有氧运动对衰老影响的概述 | 第12-15页 |
| 1.1 衰老的定义 | 第12页 |
| 1.2 衰老的机制 | 第12-13页 |
| 1.3 氧化应激学说 | 第13-14页 |
| 1.4 抗氧化防御系统 | 第14-15页 |
| 2 学习记忆概述 | 第15-16页 |
| 2.1 学习记忆的概念 | 第15页 |
| 2.2 学习记忆的分类 | 第15-16页 |
| 2.3 学习记忆与海马的关系 | 第16页 |
| 3 GAP‐43概述 | 第16-17页 |
| 3.1 GAP-43及其分布 | 第16-17页 |
| 3.2 GAP-43与学习和记忆之间关系 | 第17页 |
| 第二部分 实验研究 | 第17-40页 |
| 1 前言 | 第17-18页 |
| 2 实验材料与方法 | 第18-26页 |
| 2.1 实验对象 | 第18页 |
| 2.2 实验材料 | 第18-19页 |
| 2.2.1 训练设备 | 第18页 |
| 2.2.2 实验器材 | 第18页 |
| 2.2.3 主要实验试剂与仪器 | 第18-19页 |
| 2.3 实验方法及步骤 | 第19-20页 |
| 2.3.1 动物模型的构建 | 第19页 |
| 2.3.2 造模及运动处理 | 第19-20页 |
| 2.3.3 D-半乳糖致衰老造模 | 第20页 |
| 2.4 Morris水迷宫行为学观测 | 第20页 |
| 2.4.1 定位航行实验 | 第20页 |
| 2.4.2 空间探索实验 | 第20页 |
| 2.5 动物取材 | 第20-21页 |
| 2.6 测定大鼠大脑内MDA含量、SOD和GSH-PX活性 | 第21页 |
| 2.7 Real-timePCR检测海马的GAP-43mRNA表达水平 | 第21-24页 |
| 2.7.1 提取海马RNA | 第21页 |
| 2.7.2 RNA完整性和纯度鉴定 | 第21-22页 |
| 2.7.3 反转录反应体系 | 第22页 |
| 2.7.4 反转录反应条件 | 第22页 |
| 2.7.5 PCR扩增 | 第22-23页 |
| 2.7.6 cDNA合成 | 第23-24页 |
| 2.7.7 结果处理 | 第24页 |
| 2.8 检测海马GAP-43蛋白表达 | 第24-25页 |
| 2.8.1 组织总蛋白的提取 | 第24页 |
| 2.8.2 蛋白浓度的测定 | 第24页 |
| 2.8.3 蛋白变性 | 第24页 |
| 2.8.4 电泳 | 第24-25页 |
| 2.8.5 电转移 | 第25页 |
| 2.8.6 内参免疫印迹 | 第25页 |
| 2.8.7 灰度值分析 | 第25页 |
| 2.9 免疫荧光检测海马GAP-43表达 | 第25-26页 |
| 2.10 统计学分析 | 第26页 |
| 3 实验结果 | 第26-35页 |
| 3.1 一般状态观察 | 第26页 |
| 3.2 自由基检测结果 | 第26-29页 |
| 3.2.1 大脑皮质丙二醛检测结果 | 第26-27页 |
| 3.2.2 大鼠大脑皮质超氧化物歧化酶检测结果 | 第27-28页 |
| 3.2.3 大鼠大脑皮质谷胱苷肽过氧化物酶检测结果 | 第28-29页 |
| 3.3 Morris水迷宫行为学测试结果 | 第29-32页 |
| 3.3.1 定位航行实验数据分析 | 第29-31页 |
| 3.3.2 空间探索实验数据分析 | 第31-32页 |
| 3.4 Real-timePCR检测海马GAP-43mRNA表达量 | 第32-33页 |
| 3.5 Western-bolting检测海马GAP-43蛋白表达量 | 第33-34页 |
| 3.6 免疫组化检测海马GAP-43蛋白表达 | 第34-35页 |
| 4 讨论与分析 | 第35-39页 |
| 4.1 大鼠脑衰老造模 | 第35-36页 |
| 4.2 不同时期进行有氧运动对大鼠脑衰老的影响 | 第36-38页 |
| 4.3 不同时期进行有氧运动对脑衰老大鼠空间学习记忆能力的影响 | 第38页 |
| 4.4 不同时期进行有氧运动对大鼠海马GAP-43的影响 | 第38-39页 |
| 5 结论 | 第39-40页 |
| 参考文献 | 第40-45页 |
| 致谢 | 第45页 |
