铜色牛肝菌多糖提取、分离纯化及抗氧化性研究
| 摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-8页 |
| 第一章 文献综述 | 第12-27页 |
| 1.1 多糖的概述 | 第12-23页 |
| 1.1.1 多糖的提取工艺 | 第13-16页 |
| 1.1.2 多糖的分离纯化 | 第16-19页 |
| 1.1.3 多糖的物理及化学性质 | 第19-20页 |
| 1.1.4 多糖的结构研究 | 第20-21页 |
| 1.1.5 多糖的生物活性 | 第21-23页 |
| 1.2 牛肝菌的概述 | 第23-25页 |
| 1.3 研究目的、意义及主要研究内容 | 第25-27页 |
| 1.3.1 研究目的和意义 | 第25-26页 |
| 1.3.2 主要研究内容 | 第26-27页 |
| 第二章 铜色牛肝菌多糖提取工艺的优化 | 第27-51页 |
| 2.1 材料与仪器 | 第27-28页 |
| 2.1.1 材料与试剂 | 第27页 |
| 2.1.2 实验仪器 | 第27-28页 |
| 2.2 实验方法 | 第28-29页 |
| 2.2.1 多糖提取的单因素试验 | 第28-29页 |
| 2.2.2 多糖的制备方法 | 第29页 |
| 2.3 分析方法 | 第29-30页 |
| 2.3.1 多糖含量的测定 | 第29-30页 |
| 2.3.2 铜色牛肝菌多糖得率的计算 | 第30页 |
| 2.3.3 数据处理与分析 | 第30页 |
| 2.4 结果与讨论 | 第30-49页 |
| 2.4.1 传统热水法提取工艺条件的优化 | 第30-33页 |
| 2.4.2 碱液提取工艺条件的优化 | 第33-34页 |
| 2.4.3 微波辅助提取工艺条件的优化 | 第34-36页 |
| 2.4.4 超声波辅助提取工艺条件的优化 | 第36-39页 |
| 2.4.5 酶辅助提取工艺条件的优化 | 第39-43页 |
| 2.4.6 五种提取方法的比较 | 第43页 |
| 2.4.7 响应面法优化酶辅助法提取工艺 | 第43-49页 |
| 2.5 本章小结 | 第49-51页 |
| 第三章 铜色牛肝菌多糖的分离纯化 | 第51-66页 |
| 3.1 材料与仪器 | 第51-52页 |
| 3.1.1 材料与试剂 | 第51-52页 |
| 3.1.2 主要仪器和设备 | 第52页 |
| 3.2 试验方法 | 第52-56页 |
| 3.2.1 粗多糖的分离与纯化 | 第52-55页 |
| 3.2.2 铜色牛肝菌多糖理化性质 | 第55页 |
| 3.2.3 铜色牛肝菌多糖的分子量及单糖组成 | 第55-56页 |
| 3.3 试验结果 | 第56-65页 |
| 3.3.1 粗多糖的纯化 | 第56-62页 |
| 3.3.2 铜色牛肝菌多糖的物理和化学性质 | 第62-63页 |
| 3.3.3 纯化多糖的分子量及单糖组成 | 第63-65页 |
| 3.4 本章小结 | 第65-66页 |
| 第四章 铜色牛肝菌多糖体外抗氧化的研究 | 第66-74页 |
| 4.1 材料与仪器 | 第66页 |
| 4.1.1 材料与试剂 | 第66页 |
| 4.1.2 主要仪器和设备 | 第66页 |
| 4.2 试验方法 | 第66-68页 |
| 4.2.1 羟基自由基清除能力 | 第67页 |
| 4.2.2 DPPH自由基清除能力 | 第67页 |
| 4.2.3 还原力 | 第67-68页 |
| 4.2.4 数据分析 | 第68页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第68-72页 |
| 4.3.1 粗多糖的抗氧化能力 | 第68-70页 |
| 4.3.2 纯多糖的抗氧化能力 | 第70-72页 |
| 4.4 本章小结 | 第72-74页 |
| 第五章 结论 | 第74-76页 |
| 致谢 | 第76-77页 |
| 参考文献 | 第77-85页 |
| 附录A (攻读学位期间发表论文目录) | 第85页 |
