| 中文摘要 | 第6-8页 |
| Abstract | 第8-10页 |
| 绪论 | 第13-26页 |
| 参考文献 | 第20-26页 |
| 第一部分 晚期大肠癌的新辅助化疗后的间质衰老及相关病理指标的分析 | 第26-49页 |
| 引言 | 第26-28页 |
| 1. 材料与方法 | 第28-32页 |
| 1.1 实验材料 | 第28-31页 |
| 1.2 方法 | 第31-32页 |
| 1.3. 统计方法 | 第32页 |
| 2 结果 | 第32-37页 |
| 2.1 生存随访 | 第32页 |
| 2.2. 病理相关指标 | 第32-37页 |
| 3. 讨论 | 第37-43页 |
| 4. 结论 | 第43-44页 |
| 参考文献 | 第44-49页 |
| 第二部分 GALC 基因慢病毒构建以及过氧化氢诱导的高表达β-半乳糖苷酶 HFL1 细胞衰老模型的建立 | 第49-75页 |
| 引言 | 第49-51页 |
| 1. Galc（galactosylceramidase）双标记慢病毒载体构建 | 第51-60页 |
| 1.1 实验材料及方法 | 第51-54页 |
| 1.2. 方法（实验流程） | 第54-57页 |
| 1.3 测序结果 | 第57-60页 |
| 2. 病毒包装及滴度测定 | 第60-64页 |
| 2.1 材料与方法 | 第60-63页 |
| 2.2. 结果 | 第63-64页 |
| 3. 高表达 GALC 的 HFL1 细胞系构建 | 第64-65页 |
| 3.1. 材料与方法 | 第64页 |
| 3.2. 结果 | 第64-65页 |
| 4. 过氧化氢诱导的 HFL1 细胞衰老模型的建立 | 第65-69页 |
| 4.1. 实验材料和方法 | 第65-66页 |
| 4.2. 结果 | 第66-69页 |
| 讨论 | 第69-72页 |
| 结论 | 第72-73页 |
| 参考文献 | 第73-75页 |
| 第三部分 高表达 GALC 基因（半乳糖苷酶基因）HFL1 细胞相关衰老指标验证 | 第75-98页 |
| 引言 | 第75-76页 |
| 1. 高表达 GALC 基因（半乳糖苷酶基因）HFL1 细胞β-半乳糖苷酶染色实验 | 第76-77页 |
| 1.1 材料与方法 | 第76页 |
| 1.2 结果 | 第76-77页 |
| 2．细胞周期的检测 | 第77-78页 |
| 2.1 材料与方法 | 第77-78页 |
| 2.2 结果 | 第78页 |
| 3 Quantitative real-time PCR (qRT-PCR) 检测 HFL1-GALC 衰老指标 | 第78-84页 |
| 3.1 材料与方法 | 第78-80页 |
| 3.2 结果 | 第80-84页 |
| 4. Western-blot 法检测 HFL1-GALC 细胞的衰老指标 | 第84-90页 |
| 4.1 材料与方法 | 第84-89页 |
| 4.2 结果 | 第89-90页 |
| 讨论 | 第90-94页 |
| 结论 | 第94-95页 |
| 参考文献 | 第95-98页 |
| 第四部分 Transwel 小室共培养条件下高表达β-半乳糖苷酶 HFL1 细胞对结肠癌细胞的影响 | 第98-120页 |
| 引言 | 第98-99页 |
| 1. 支原体的检测 | 第99-101页 |
| 1.1 实验材料 | 第99-100页 |
| 1.2 实验方法 | 第100页 |
| 1.3 实验结果 | 第100-101页 |
| 2. 共培养条件下细胞活力、细胞周期、细胞迁移 | 第101-111页 |
| 2.1 相关实验方法 | 第101-103页 |
| 2.2 结果 | 第103-111页 |
| 讨论 | 第111-116页 |
| 结论 | 第116-117页 |
| 参考文献 | 第117-120页 |
| 论文结论 | 第120-121页 |
| 附录 | 第121-125页 |
| 英文缩略语表 | 第121-122页 |
| 1. 实验所需一般试剂 | 第122页 |
| 2. 实验所需仪器 | 第122-123页 |
| 3. 器皿及耗材 | 第123页 |
| 4. 所需试剂 | 第123-125页 |
| 发表文章 | 第125-126页 |
| 致谢 | 第126页 |
