| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-8页 |
| 目录 | 第9-12页 |
| 英文缩写一览表 | 第12-13页 |
| 引言 | 第13-16页 |
| 材料和方法 | 第16-24页 |
| 1 材料 | 第16-17页 |
| 1.1 研究对象与分组 | 第16页 |
| 1.2 主要试剂 | 第16-17页 |
| 1.3 主要仪器 | 第17页 |
| 2 实验方法 | 第17-23页 |
| 2.1 建立动物模型 | 第17页 |
| 2.2 实验方法和标本处理 | 第17-18页 |
| 2.3 HE 染色 | 第18页 |
| 2.4 荧光 TUNEL 检测 | 第18页 |
| 2.5 生殖细胞总 RNA 提取 | 第18-19页 |
| 2.6 RNA 纯度测定 | 第19页 |
| 2.7 反转录合成 cDNA | 第19页 |
| 2.8 生殖细胞总蛋白提取 | 第19-20页 |
| 2.9 Real-time PCR 测定 Caspase-3 mRNA 的表达 | 第20-21页 |
| 2.9.1 引物设计 | 第20页 |
| 2.9.2 Real-time PCR 反应体系 | 第20页 |
| 2.9.3 反应条件 | 第20-21页 |
| 2.10 Western blot 检测 Caspase-3 蛋白的表达 | 第21-23页 |
| 2.10.1 SDS-聚丙烯酸胺凝胶电泳（SDS－PAGE） | 第21页 |
| 2.10.2 转膜 | 第21-22页 |
| 2.10.3 封闭（block） | 第22页 |
| 2.10.4 孵一抗 | 第22页 |
| 2.10.5 洗膜 | 第22页 |
| 2.10.6 孵二抗 | 第22页 |
| 2.10.7 再次洗膜 | 第22页 |
| 2.10.8 增强化学发光法(ECL)显色 | 第22-23页 |
| 3 统计学分析 | 第23-24页 |
| 结果 | 第24-28页 |
| 1 小鼠基本情况的变化 | 第24-25页 |
| 1.1 实验前后小鼠体重变化 | 第24页 |
| 1.2 小鼠睾丸平均重量及脏器指数 | 第24-25页 |
| 2 小鼠睾丸 HE 染色结果 | 第25-26页 |
| 2.1 睾丸组织病理学变化 | 第25页 |
| 2.2 曲精小管平均直径（MID）生精上皮细胞计数（CMSE）睾丸活检评分（Johnsen’s 评分）变化 | 第25-26页 |
| 3 荧光 TUNEL 法检测细胞凋亡 | 第26页 |
| 4 Caspase-3 mRNA 的表达 | 第26-27页 |
| 5 Caspase-3 蛋白的表达 | 第27-28页 |
| 讨论 | 第28-31页 |
| 结论 | 第31-32页 |
| 附图 | 第32-38页 |
| 参考文献 | 第38-41页 |
| 综述 | 第41-64页 |
| 1. 介绍 | 第41-42页 |
| 2. 回顾范围 | 第42页 |
| 3. 细胞凋亡的过程 | 第42-43页 |
| 4. 精子的形成 | 第43页 |
| 5. 雄性生殖细胞的凋亡 | 第43-48页 |
| 5.1 雄性生殖细胞发育中的内源性凋亡通路 | 第43-44页 |
| 5.2 雄性生殖细胞发育中的外源性凋亡通路 | 第44-45页 |
| 5.3 激素和男性生殖细胞凋亡 | 第45-46页 |
| 5.4 毒性物质诱导的男性生殖细胞凋亡 | 第46-47页 |
| 5.5 温度所致的男性生殖细胞凋亡 | 第47页 |
| 5.6 睾丸炎引起的男性生殖细胞凋亡 | 第47页 |
| 5.7 精子晚期分化引起的凋亡 | 第47-48页 |
| 6. 畸胎瘤细胞中的凋亡 | 第48-49页 |
| 7. 小分子 RNA 调节雄性生殖细胞的凋亡 | 第49-51页 |
| 7.1 miRNA 在精子发生过程中的生物合成 | 第49-50页 |
| 7.2 miRNA 在精子发生过程中发挥特定作用的证据 | 第50页 |
| 7.3 miRNA 对雄性生殖细胞存活的临床意义 | 第50-51页 |
| 8. 用于研究男性生殖细胞凋亡基因敲除和转基因小鼠模型 | 第51页 |
| 9. 预测精子受精能力的凋亡标记物 | 第51页 |
| 10. 结论与展望 | 第51-53页 |
| 参考文献 | 第53-64页 |
| 个人简历及在校期间发表的学术论文 | 第64-65页 |
| 个人简历 | 第64页 |
| 学术论文 | 第64-65页 |
| 致谢 | 第65页 |
