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Caspase-3在乙醇致睾丸损伤中的表达及意义

摘要第4-6页
Abstract第6-8页
目录第9-12页
英文缩写一览表第12-13页
引言第13-16页
材料和方法第16-24页
    1 材料第16-17页
        1.1 研究对象与分组第16页
        1.2 主要试剂第16-17页
        1.3 主要仪器第17页
    2 实验方法第17-23页
        2.1 建立动物模型第17页
        2.2 实验方法和标本处理第17-18页
        2.3 HE 染色第18页
        2.4 荧光 TUNEL 检测第18页
        2.5 生殖细胞总 RNA 提取第18-19页
        2.6 RNA 纯度测定第19页
        2.7 反转录合成 cDNA第19页
        2.8 生殖细胞总蛋白提取第19-20页
        2.9 Real-time PCR 测定 Caspase-3 mRNA 的表达第20-21页
            2.9.1 引物设计第20页
            2.9.2 Real-time PCR 反应体系第20页
            2.9.3 反应条件第20-21页
        2.10 Western blot 检测 Caspase-3 蛋白的表达第21-23页
            2.10.1 SDS-聚丙烯酸胺凝胶电泳(SDS-PAGE)第21页
            2.10.2 转膜第21-22页
            2.10.3 封闭(block)第22页
            2.10.4 孵一抗第22页
            2.10.5 洗膜第22页
            2.10.6 孵二抗第22页
            2.10.7 再次洗膜第22页
            2.10.8 增强化学发光法(ECL)显色第22-23页
    3 统计学分析第23-24页
结果第24-28页
    1 小鼠基本情况的变化第24-25页
        1.1 实验前后小鼠体重变化第24页
        1.2 小鼠睾丸平均重量及脏器指数第24-25页
    2 小鼠睾丸 HE 染色结果第25-26页
        2.1 睾丸组织病理学变化第25页
        2.2 曲精小管平均直径(MID)生精上皮细胞计数(CMSE)睾丸活检评分(Johnsen’s 评分)变化第25-26页
    3 荧光 TUNEL 法检测细胞凋亡第26页
    4 Caspase-3 mRNA 的表达第26-27页
    5 Caspase-3 蛋白的表达第27-28页
讨论第28-31页
结论第31-32页
附图第32-38页
参考文献第38-41页
综述第41-64页
    1. 介绍第41-42页
    2. 回顾范围第42页
    3. 细胞凋亡的过程第42-43页
    4. 精子的形成第43页
    5. 雄性生殖细胞的凋亡第43-48页
        5.1 雄性生殖细胞发育中的内源性凋亡通路第43-44页
        5.2 雄性生殖细胞发育中的外源性凋亡通路第44-45页
        5.3 激素和男性生殖细胞凋亡第45-46页
        5.4 毒性物质诱导的男性生殖细胞凋亡第46-47页
        5.5 温度所致的男性生殖细胞凋亡第47页
        5.6 睾丸炎引起的男性生殖细胞凋亡第47页
        5.7 精子晚期分化引起的凋亡第47-48页
    6. 畸胎瘤细胞中的凋亡第48-49页
    7. 小分子 RNA 调节雄性生殖细胞的凋亡第49-51页
        7.1 miRNA 在精子发生过程中的生物合成第49-50页
        7.2 miRNA 在精子发生过程中发挥特定作用的证据第50页
        7.3 miRNA 对雄性生殖细胞存活的临床意义第50-51页
    8. 用于研究男性生殖细胞凋亡基因敲除和转基因小鼠模型第51页
    9. 预测精子受精能力的凋亡标记物第51页
    10. 结论与展望第51-53页
    参考文献第53-64页
个人简历及在校期间发表的学术论文第64-65页
    个人简历第64页
    学术论文第64-65页
致谢第65页

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