| 摘要 | 第4-7页 |
| Abstract | 第7-9页 |
| 目录 | 第10-11页 |
| 英文縮略词 | 第11-12页 |
| 1 前言 | 第12-15页 |
| 2 材料与方法 | 第15-24页 |
| 2.1 材料 | 第15-16页 |
| 2.2 主要溶液的制备 | 第16-17页 |
| 2.3 实验动物建模、标本处理 | 第17-20页 |
| 2.4 冰冻切片 | 第20页 |
| 2.5 NISSL染色 | 第20页 |
| 2.6 大鼠海马组织神经元细胞核的制备 | 第20-22页 |
| 2.7 细胞核制备纯度的检测 | 第22页 |
| 2.8 细胞核免疫荧光 | 第22-23页 |
| 2.9 统计学方法 | 第23-24页 |
| 3 结果 | 第24-29页 |
| 3.1 氯化锂-匹罗卡品致痫模型 | 第24-25页 |
| 3.2 大鼠脑电图变化 | 第25-26页 |
| 3.3 癫痫模型大鼠海马结构的病理学改变 | 第26页 |
| 3.4 大鼠正常海马组织神经元细胞核提取结果 | 第26-27页 |
| 3.5 核膜通透性变化和凋亡细胞核检测结果 | 第27-28页 |
| 3.6 核膜通透性改变部位与和核孔关系验证的荧光结果 | 第28-29页 |
| 4 讨论 | 第29-33页 |
| 4.1 氯化锂-匹罗卡品致痫动物模型 | 第29页 |
| 4.2 氯化锂-匹罗卡品致痫后大鼠海马病理学改变 | 第29-30页 |
| 4.3 大鼠海马组织神经元细胞核分离方法 | 第30页 |
| 4.4 大鼠海马神经元核膜通透性改变状况 | 第30-32页 |
| 4.6 后续的研究计划 | 第32-33页 |
| 5 结论 | 第33-34页 |
| 参考文献 | 第34-39页 |
| 附图 | 第39-43页 |
| 综述 | 第43-57页 |
| 参考文献 | 第50-57页 |
| 致谢 | 第57页 |