| 摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 第1章 绪论 | 第9-22页 |
| 1.1 光合作用的类型 | 第10-18页 |
| 1.1.1 光合作用的C_3、C_4途径研究 | 第10-11页 |
| 1.1.2 C_4植物光合优势的研究 | 第11-12页 |
| 1.1.3 C_4植物的分类 | 第12-15页 |
| 1.1.4 C_3植物中C_4途径的发现研究 | 第15-16页 |
| 1.1.5 C_3植物中“C_4途径”表达的影响因素 | 第16-17页 |
| 1.1.6 转C_4基因水稻的研究进展 | 第17-18页 |
| 1.2 转C_4基因水稻生理生化 | 第18-20页 |
| 1.2.1 转C_4基因水稻光合及产量相关研究 | 第18-19页 |
| 1.2.2 转C_4基因水稻抗逆性研究进展 | 第19-20页 |
| 1.3 外源物质对植物叶片光合效能的影响 | 第20页 |
| 1.4 本研究的意义 | 第20-22页 |
| 第2章 转PEPC基因水稻幼苗光合及C_4酶活性的变化 | 第22-35页 |
| 2.1 材料 | 第22页 |
| 2.2 方法 | 第22-26页 |
| 2.2.1 叶切片光合放氧速率的测定 | 第22页 |
| 2.2.2 净光合速率的测定 | 第22-23页 |
| 2.2.3 酶活性的测定 | 第23-26页 |
| 2.2.3.1 粗酶液的提取 | 第23页 |
| 2.2.3.2 可溶性蛋白含量的测定 | 第23页 |
| 2.2.3.3 各种C_4酶活性的测定 | 第23-26页 |
| 2.3 结果与分析 | 第26-32页 |
| 2.3.1 叶切片光合放氧速率的变化 | 第26-27页 |
| 2.3.2 水稻幼苗光合速率的测定结果 | 第27页 |
| 2.3.3 外源饲喂条件下水稻幼苗C_4酶活性变化 | 第27-32页 |
| 2.4 讨论 | 第32-35页 |
| 第3章 转PEPC基因水稻C_4酶基因的定量PCR检测及部分蛋白的Western-Blot检测 | 第35-50页 |
| 3.1 材料 | 第35页 |
| 3.2 方法 | 第35-45页 |
| 3.2.1 C_4酶基因表达的荧光定量PCR(QRT-PCR)检测 | 第35-40页 |
| 3.2.1.1 水稻总RNA提取的准备工作 | 第35页 |
| 3.2.1.2 水稻总RNA的提取 | 第35-36页 |
| 3.2.1.3 RNA的纯化 | 第36页 |
| 3.2.1.4 电泳检测水稻总RNA纯度方法 | 第36-37页 |
| 3.2.1.5 cDNA的合成 | 第37-38页 |
| 3.2.1.6 引物序列设计 | 第38-39页 |
| 3.2.1.7 半定量RT-PCR检测 | 第39页 |
| 3.2.1.8 定量RT-PCR检测 | 第39-40页 |
| 3.2.2 部分酶蛋白的Western blot检测 | 第40-45页 |
| 3.2.2.1 可溶性蛋白的提取 | 第41页 |
| 3.2.2.2 SDS-PAGE电泳 | 第41页 |
| 3.2.2.3 转膜 | 第41-42页 |
| 3.2.2.4 封闭膜的免疫球蛋白结合位点 | 第42-43页 |
| 3.2.2.5 免疫检测 | 第43页 |
| 3.2.2.6 酶联抗体与生色底物的反应 | 第43-45页 |
| 3.3 结果分析与讨论 | 第45-50页 |
| 3.3.1 水稻幼苗总RNA纯度的琼脂糖凝胶电泳检测 | 第45页 |
| 3.3.2 水稻幼苗中C_4酶基因表达的半定量RT-PCR分析 | 第45-46页 |
| 3.3.3 水稻幼苗C_4光合酶基因表达的qRT-PCR分析 | 第46-47页 |
| 3.3.4 水稻幼苗C_4光合酶的蛋白丰度检测 | 第47-50页 |
| 全文讨论 | 第50-53页 |
| 附录 缩略语 | 第53-54页 |
| 参考文献 | 第54-65页 |
| 在读期间发表的学术论文及研究成果 | 第65-66页 |
| 致谢 | 第66页 |
