| 摘要 | 第2-3页 |
| SUMMARY | 第3-4页 |
| 缩略词 | 第5-10页 |
| 绪论 | 第10-11页 |
| 第一章 文献综述 | 第11-22页 |
| 1.1 葡萄再生体系的研究进展 | 第11-16页 |
| 1.1.1 葡萄再生途径 | 第11-12页 |
| 1.1.1.1 器官发生途径 | 第11页 |
| 1.1.1.2 胚状体发生途径 | 第11-12页 |
| 1.1.2 影响葡萄诱导胚状体的因素 | 第12-15页 |
| 1.1.2.1 基因型 | 第12页 |
| 1.1.2.2 外植体类型 | 第12-13页 |
| 1.1.2.3 培养基 | 第13-14页 |
| 1.1.2.4 植物激素种类及浓度 | 第14页 |
| 1.1.2.5 培养方式 | 第14页 |
| 1.1.2.6 培养条件 | 第14-15页 |
| 1.1.2.7 体细胞胚的保存、萌发及成苗 | 第15页 |
| 1.1.3 葡萄胚状体诱导存在的问题 | 第15-16页 |
| 1.2 葡萄胚性悬浮系的研究进展 | 第16-18页 |
| 1.2.1 影响胚性细胞悬浮培养的因素 | 第16-18页 |
| 1.2.1.1 起始材料 | 第16-17页 |
| 1.2.1.2 继代次数及周期 | 第17页 |
| 1.2.1.3 接种量 | 第17页 |
| 1.2.1.4 培养基与新鲜培养基的比例 | 第17-18页 |
| 1.2.1.5 悬浮培养的条件 | 第18页 |
| 1.2.2 细胞悬浮培养的应用前景 | 第18页 |
| 1.3 葡萄原生质体的研究进展 | 第18-21页 |
| 1.3.1 影响葡萄原生质体分离的因素 | 第19-21页 |
| 1.3.1.1 材料选择及预处理 | 第19-20页 |
| 1.3.1.2 原生质体分离 | 第20页 |
| 1.3.1.3 原生质体纯化、产量及活力测定 | 第20-21页 |
| 1.4 本试验目的及意义 | 第21-22页 |
| 第二章 茎尖脱分化愈伤组织 | 第22-32页 |
| 2.1 材料 | 第22页 |
| 2.2 试验方法 | 第22-24页 |
| 2.2.1 茎尖脱分化愈伤组织 | 第22-23页 |
| 2.2.2 不同类型愈伤组织的增殖培养 | 第23-24页 |
| 2.2.3 试验数据统计分析 | 第24页 |
| 2.3 结果与分析 | 第24-30页 |
| 2.3.1 葡萄茎尖愈伤组织的分化 | 第24-25页 |
| 2.3.2 蜂蜜对愈伤组织诱导的影响 | 第25-26页 |
| 2.3.3 6-BA与 2,4-D不同浓度配比对愈伤组织的影响 | 第26-27页 |
| 2.3.4 不同蔗糖浓度对愈伤组织的影响 | 第27-28页 |
| 2.3.5 不同培养方式对茎尖脱分化愈伤组织的影响 | 第28-29页 |
| 2.3.6 不同类型愈伤组织在不同培养基中增殖情况 | 第29-30页 |
| 2.4 讨论 | 第30-32页 |
| 第三章 胚状体诱导 | 第32-45页 |
| 3.1 材料 | 第32页 |
| 3.2 方法 | 第32-34页 |
| 3.2.1 胚性愈伤组织诱导 | 第32-33页 |
| 3.2.2 胚状体诱导 | 第33-34页 |
| 3.2.3 胚状体保存及萌发 | 第34页 |
| 3.2.4 数据统计与分析 | 第34页 |
| 3.3 试验结果与分析 | 第34-43页 |
| 3.3.1 愈伤组织胚性诱导过程 | 第35-37页 |
| 3.3.2 不同浓度PVP和AC对愈伤组织褐化的影响 | 第37页 |
| 3.3.3 胚状体诱导过程 | 第37-41页 |
| 3.3.3.1 固体培养 | 第37-39页 |
| 3.3.3.2 液体培养 | 第39-41页 |
| 3.3.4 体细胞胚的萌发与保存 | 第41-43页 |
| 3.4 讨论 | 第43-45页 |
| 第四章 胚性悬浮体系的建立及原生质体的制备 | 第45-56页 |
| 4.1 材料 | 第45页 |
| 4.2 方法 | 第45-46页 |
| 4.2.1 细胞悬浮培养体系建立 | 第45页 |
| 4.2.2 原生质体制备 | 第45-46页 |
| 4.3 数据统计与分析 | 第46-47页 |
| 4.3.1 悬浮细胞生长量的测定 | 第46-47页 |
| 4.3.2 细胞观察 | 第47页 |
| 4.3.3 原生质体产量与活力测定 | 第47页 |
| 4.4 结果与分析 | 第47-54页 |
| 4.4.1 胚性悬浮系的建立 | 第47-48页 |
| 4.4.2 细胞生长曲线 | 第48-49页 |
| 4.4.3 葡萄细胞悬浮培养接种量的选择 | 第49-50页 |
| 4.4.4 NAA与KT对细胞悬浮培养的影响 | 第50-51页 |
| 4.4.5 酶解材料对原生质体分离的影响 | 第51页 |
| 4.4.6 酶液组合对原生质体分离的影响 | 第51-52页 |
| 4.4.7 酶解时间对原生质体分离的影响 | 第52-54页 |
| 4.5 讨论 | 第54-56页 |
| 第五章 结论 | 第56-58页 |
| 5.1 黑比诺、贝达葡萄愈伤组织的诱导及再生体系建立 | 第56页 |
| 5.2 黑比诺和贝达胚性悬浮系的建立 | 第56-57页 |
| 5.3 葡萄原生质体分离条件的优化 | 第57-58页 |
| 参考文献 | 第58-67页 |
| 作者简介 | 第67-68页 |
| 导师简介 | 第68-69页 |
| 致谢 | 第69-70页 |
