| 缩略语表 | 第6-8页 |
| 中文摘要 | 第8-14页 |
| ABSTRACT | 第14-19页 |
| 前言 | 第21-23页 |
| 文献回顾 | 第23-35页 |
| 第一部分：HCN通道在人和大鼠膀胱分布及表达 | 第35-61页 |
| 1 实验材料及仪器 | 第35-40页 |
| 1.1 实验材料 | 第35-36页 |
| 1.2 主要试剂 | 第36-39页 |
| 1.3 主要仪器及设备 | 第39-40页 |
| 2 实验方法 | 第40-43页 |
| 2.1 人体膀胱组织ICC细胞及HCN通道免疫荧光染色 | 第40-41页 |
| 2.2 大鼠膀胱组织ICCs及HCN通道免疫荧光染色 | 第41-42页 |
| 2.3 人体膀胱组织Western blot检测 | 第42页 |
| 2.4 大鼠膀胱组织Western blot检测 | 第42-43页 |
| 2.5 统计学处理 | 第43页 |
| 3 结果 | 第43-58页 |
| 3.1 免疫组化检测HCN各通道亚型在正常人膀胱组织中表达及结果分析 | 第43-46页 |
| 3.2 c-kit阳性ICC细胞与vimentin阳性ICC细胞在正常人膀胱组织中表达 | 第46-48页 |
| 3.3 肥大细胞在正常人膀胱组织中表达情况 | 第48-49页 |
| 3.4 Western blot检测HCN通道在人膀胱逼尿肌组织中表达及结果分析 | 第49-51页 |
| 3.5 免疫组化检测HCN通道在正常大鼠膀胱粘膜及粘膜下组织中的表达及结果分析 | 第51-54页 |
| 3.6 免疫组化检测HCN通道在正常大鼠膀胱肌层中的表达及结果分析 | 第54-56页 |
| 3.7 Western blot检测HCN通道在正常大鼠膀胱组织中表达及结果分析 | 第56-58页 |
| 4 讨论 | 第58-61页 |
| 第二部分：HCN4 通道OAB膀胱中分布和表达 | 第61-77页 |
| 1 实验材料及仪器 | 第61-62页 |
| 1.1 实验动物 | 第61页 |
| 1.2 主要试剂 | 第61-62页 |
| 1.3 主要仪器及设备 | 第62页 |
| 2 实验方法 | 第62-67页 |
| 2.1 大鼠OAB模型的建立 | 第62-64页 |
| 2.2 大鼠膀胱组织ICCs及HCN受体免疫荧光染色 | 第64页 |
| 2.3 大鼠膀胱ICC细胞体外培养 | 第64-66页 |
| 2.4 大鼠膀胱体外ICC细胞及HCN受体免疫荧光染色 | 第66页 |
| 2.5 大鼠OAB模型膀胱组织Western blot检测 | 第66-67页 |
| 2.6 统计学处理 | 第67页 |
| 3 结果 | 第67-74页 |
| 3.1 尿动力检测大鼠OAB模型中不同组间自发性收缩变化 | 第67-68页 |
| 3.2 免疫组化检测大鼠OAB模型中ICC细胞和HCN4 通道的表达情况及结果分析 | 第68-72页 |
| 3.3 Western blot检测大鼠OAB模型中肌层HCN4 通道的表达情况及结果分析 | 第72-74页 |
| 4 讨论 | 第74-77页 |
| 第三部分：HCN4 通道OAB发病过程中的机制研究 | 第77-89页 |
| 1 实验材料及仪器 | 第77-80页 |
| 1.1 实验动物 | 第77页 |
| 1.2 主要试剂 | 第77-79页 |
| 1.3 主要仪器及设备 | 第79-80页 |
| 2 实验方法 | 第80-82页 |
| 2.1 膀胱ICC细胞准备 | 第80页 |
| 2.2 膜片钳对ICC细胞检测 | 第80-82页 |
| 2.3 数据采集和统计分析 | 第82页 |
| 3 结果 | 第82-86页 |
| 3.1 膜片钳检测ICC细胞和逼尿肌细胞的电流特征 | 第82-84页 |
| 3.2 胞外ZD7288 对ICC细胞Ih电流的阻断 | 第84页 |
| 3.3 膜片钳检测正常和对照各组ICC细胞Ih电流变化 | 第84-86页 |
| 4 讨论 | 第86-89页 |
| 小结 | 第89-91页 |
| 参考文献 | 第91-110页 |
| 附录 | 第110-112页 |
| 个人简历和研究成果 | 第112-113页 |
| 致谢 | 第113页 |
