| 缩略语表 | 第6-7页 |
| 中文摘要 | 第7-10页 |
| 英文摘要 | 第10-12页 |
| 前言 | 第13-14页 |
| 文献回顾 | 第14-28页 |
| 第一部分 创伤性颞下颌关节强直动物模型的建立 | 第28-35页 |
| 1 材料 | 第28页 |
| 1.1 实验动物 | 第28页 |
| 1.2 螺旋CT | 第28页 |
| 2 方法 | 第28-30页 |
| 2.1 实验动物的分组 | 第28页 |
| 2.2 动物模型制备 | 第28-30页 |
| 2.3 大体观察 | 第30页 |
| 2.4 螺旋CT扫描 | 第30页 |
| 2.5 统计学方法 | 第30页 |
| 3 结果 | 第30-32页 |
| 3.1 动物模型的建立 | 第30页 |
| 3.2 大体观察 | 第30-31页 |
| 3.3 螺旋CT | 第31-32页 |
| 4 讨论 | 第32-35页 |
| 4.1 实验动物的选择 | 第32-33页 |
| 4.2 建模方法的确定 | 第33页 |
| 4.3 实验结果分析 | 第33-35页 |
| 第二部分 创伤性颞下颌关节强直相关分子的初步筛选 | 第35-71页 |
| 实验一 利用基因芯片初步筛选创伤性颞下颌关节强直相关分子 | 第35-64页 |
| 1 材料 | 第35-36页 |
| 1.1 实验动物 | 第35页 |
| 1.2 芯片实验所用仪器 | 第35-36页 |
| 1.3 芯片实验所用试剂 | 第36页 |
| 2 方法 | 第36-37页 |
| 2.1 实验动物分组 | 第36页 |
| 2.2 动物模型制备 | 第36页 |
| 2.3 取材 | 第36页 |
| 2.4 RNA抽提、纯化及质检 | 第36页 |
| 2.5 芯片杂交、扫描和分析 | 第36-37页 |
| 2.6 芯片数据进一步分析 | 第37页 |
| 3 结果 | 第37-57页 |
| 3.1 动物模型的建立 | 第37页 |
| 3.2 RNA质检结果 | 第37-38页 |
| 3.3 基因芯片结果 | 第38-57页 |
| 4 讨论 | 第57-64页 |
| 4.1 多种手段结果分析并筛选相关分子 | 第58-61页 |
| 4.2 筛选出感兴趣分子在成骨中的作用 | 第61-64页 |
| 实验二 RT-QPCR验证创伤性TMJ强直部分相关分子 | 第64-71页 |
| 1 材料 | 第64-65页 |
| 1.1 实验动物 | 第64页 |
| 1.2 试剂 | 第64页 |
| 1.3 仪器 | 第64-65页 |
| 2 方法 | 第65-66页 |
| 2.1 实验动物分组 | 第65页 |
| 2.2 动物模型制备 | 第65页 |
| 2.3 取材 | 第65页 |
| 2.4 RNA抽提、纯化及质检 | 第65页 |
| 2.5 RT-qPCR分析 | 第65-66页 |
| 2.6 统计学方法 | 第66页 |
| 3 结果 | 第66-68页 |
| 4 讨论 | 第68-71页 |
| 小结 | 第71-73页 |
| 参考文献 | 第73-78页 |
| 附录 | 第78-79页 |
| 个人简历和研究成果 | 第79-81页 |
| 致谢 | 第81页 |