| 摘要 | 第6-8页 |
| Abstract | 第8-10页 |
| 缩略词表 | 第11-15页 |
| 第一章 文献综述 | 第15-37页 |
| 1 海洋聚球藻 | 第15-19页 |
| 1.1 形态结构特征及分布 | 第15-16页 |
| 1.2 光合机构特征 | 第16-19页 |
| 2 蓝藻氧化胁迫 | 第19-26页 |
| 2.1 ROS的产生与作用部位 | 第19-21页 |
| 2.2 蓝藻氧化胁迫的来源 | 第21页 |
| 2.3 蓝藻典型的氧化损伤 | 第21-22页 |
| 2.4 氧化胁迫的防御 | 第22-25页 |
| 2.5 响应氧化胁迫的调控 | 第25-26页 |
| 3 蓝藻超氧化物歧化酶 | 第26-35页 |
| 3.1 FeSOD和MnSOD | 第30-31页 |
| 3.2 Cu/ZnSOD | 第31-32页 |
| 3.3 NiSOD | 第32-35页 |
| 4 立题依据和研究方法、内容及意义 | 第35-37页 |
| 第二章 两种SOD在海洋聚球藻生长和光合作用过程中的作用 | 第37-57页 |
| 1 前言 | 第37-38页 |
| 2 材料与方法 | 第38-44页 |
| 2.1 藻株及其培养条件 | 第38-40页 |
| 2.2 Cu和/或Ni限制对藻株生长的影响 | 第40页 |
| 2.3 叶绿素荧光的测定 | 第40-41页 |
| 2.4 SYNC_0755和SYNC_1771抗体的制备 | 第41-43页 |
| 2.5 sync_0755和sync_1771编码产物的鉴定 | 第43-44页 |
| 2.6 膜的分离及免疫印迹分析 | 第44页 |
| 3 结果 | 第44-54页 |
| 3.1 Cu和/或Ni限制对藻株生长和光合作用的影响 | 第44-49页 |
| 3.2 Cu和/或Ni限制条件下聚球藻CC9311中SODs的表达 | 第49-53页 |
| 3.3 聚球藻CC9311中两种SOD的定位 | 第53-54页 |
| 4 讨论 | 第54-57页 |
| 第三章 聚球藻CC9311的NiSOD在蓝藻中的外源表达 | 第57-88页 |
| 1 前言 | 第57-58页 |
| 2 材料与方法 | 第58-73页 |
| 2.1 蓝藻的培养 | 第58-59页 |
| 2.2 蓝藻基因组DNA的提取 | 第59页 |
| 2.3 载体的构建 | 第59-71页 |
| 2.4 Synechococcus 6803的遗传转化(自然转化) | 第71页 |
| 2.5 Nostoc 7120的遗传转化(接合转移) | 第71-72页 |
| 2.6 蓝藻RNA的提取与cDNA的合成 | 第72-73页 |
| 2.7 Anti-NiSOD抗体的制备和免疫印迹分析 | 第73页 |
| 3 结果 | 第73-85页 |
| 4 讨论 | 第85-88页 |
| 第四章 聚球藻Cu/ZnSOD的异源表达与集胞藻PCC6803 FeSOD的功能 | 第88-111页 |
| 1 前言 | 第88-90页 |
| 2 材料和方法 | 第90-99页 |
| 2.1 藻株的培养 | 第90-91页 |
| 2.2 质粒的构建 | 第91-96页 |
| 2.3 Synechocystis 6803突变株和互补株的转化 | 第96页 |
| 2.4 胶内活性染色检测SOD活性 | 第96-97页 |
| 2.5 叶绿素荧光的测定 | 第97页 |
| 2.6 FeSOD和Cu/ZnSOD抗体的制备 | 第97页 |
| 2.7 Synechocystis 6803膜系统的分离 | 第97-99页 |
| 2.8 免疫印迹检测膜蛋白的纯度及SODs的定位 | 第99页 |
| 3 结果 | 第99-108页 |
| 3.1 sodB是Synechocystis 6803光合自养生长所必需的基因 | 第99-103页 |
| 3.2 Synechococcus 9311 sodC转化Synechocystis 6803 sodB-突变株的表型 | 第103-106页 |
| 3.3 Synechocystis 6803 sodC互补株中FeSOD和Cu/ZnSOD的亚细胞定位 | 第106-108页 |
| 4 讨论 | 第108-111页 |
| 结论与展望 | 第111-112页 |
| 参考文献 | 第112-132页 |
| 在读期间发表和撰写的论文 | 第132-133页 |
| 致谢 | 第133页 |
