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基于炎性体研究单增李斯特菌致小鼠流产的分子机制

摘要第4-6页
Abstract第6-8页
1 引言第12-25页
    1.1 LM 的危害和致毒机理第12-16页
        1.1.1 LM 的生物学特征、传播及危害第12-13页
        1.1.2 LM 的致病过程及其主要毒力因子第13-16页
    1.2 母胎界面的细胞和细胞因子第16-21页
        1.2.1 母胎界面细胞成分及免疫生物学特性第16-19页
        1.2.2 母胎界面细胞因子网络平衡与流产第19-21页
    1.3 炎性体及其激活机制第21-25页
        1.3.1 炎性体的概念第21-22页
        1.3.2 炎性体的组成第22-23页
        1.3.3 炎性体的激活第23页
        1.3.4 LM 对炎性体的激活第23-25页
2 实验一 LM 对小鼠胚胎存活率及胎盘相关因子表达的影响第25-37页
    2.1 实验材料第25-27页
        2.1.1 菌株和实验动物第25页
        2.1.2 主要试剂第25页
        2.1.3 试剂的配制第25-26页
        2.1.4 主要仪器设备第26-27页
    2.2 实验方法第27-30页
        2.2.1 李斯特菌悬液的制备第27页
        2.2.2 动物处理第27页
        2.2.3 试验取样第27-28页
        2.2.4 细胞因子含量的测定第28页
        2.2.5 胎盘组织 caspase1 的检测第28-29页
        2.2.6 统计处理第29-30页
    2.3 实验结果第30-33页
        2.3.1 LM 对胚胎存活率的影响第30页
        2.3.2 LM 对妊娠小鼠胎盘 Th1/Th2 型细胞因子的影响第30-32页
        2.3.3 LM 对妊娠小鼠胎盘和血清中 IL-1β的影响第32页
        2.3.4 LM 感染对妊娠小鼠胎盘 caspase1 的影响第32-33页
    2.4 讨论第33-36页
        2.4.1 LM 对小鼠胚胎存活率的影响第33-34页
        2.4.2 LM 对妊娠小鼠胎盘主要 Thl/Th2 型细胞因子的影响第34-35页
        2.4.3 LM 对妊娠小鼠血清和胎盘中 IL-1β含量的影响第35页
        2.4.4 LM 对妊娠小鼠胎盘炎性体的激活第35-36页
    2.5 小结第36-37页
3 实验二 重组 LLO 在大肠杆菌中分泌表达及活性分析第37-50页
    3.1 试验材料第37-39页
        3.1.1 菌株、载体和细胞第37页
        3.1.2 主要试剂第37页
        3.1.3 培养基及溶液的配制第37-39页
        3.1.4 主要仪器第39页
    3.2 实验方法第39-45页
        3.2.1 LLO 基因的 PCR 扩增第39-40页
        3.2.2 LLO 基因重组载体 pET-20b-LLO 的构建第40-44页
        3.2.3 重组质粒 pET-20b-LLO 在原核细胞中的表达及活性鉴定第44-45页
    3.3 结果第45-48页
        3.3.1 LLO 基因的扩增及其表达载体的构建第45-46页
        3.3.2 重组 LLO 在大肠杆菌中的分泌表达第46-47页
        3.3.3 重组 LLO 的活性分析第47页
        3.3.4 不同诱导条件对重组 LLO 表达量的影响第47-48页
    3.4 讨论第48-49页
    3.5 小结第49-50页
4 实验三 LM 对巨噬细胞炎性体的激活机制第50-65页
    4.1 实验材料第50-52页
        4.1.1 菌株及细胞系第50页
        4.1.2 主要试剂第50页
        4.1.3 试剂的配制第50-51页
        4.1.4 主要仪器第51-52页
    4.2 实验方法第52-54页
        4.2.1 细胞的复苏、培养和冻存第52页
        4.2.2 LM 对巨噬细胞的感染第52-53页
        4.2.3 IL-1β浓度的测定第53页
        4.2.4 Western-Blot 检测 caspase1 的表达第53页
        4.2.5 RT-PCR 检测细胞因子和趋化因子 mRNA 水平第53-54页
        4.2.6 细胞凋亡的检测第54页
        4.2.7 LDH 释放的测定第54页
        4.2.8 激光共聚焦显微镜染色第54页
    4.3 实验结果第54-62页
        4.3.1 LM 促进了巨噬细胞 IL-1β的表达第54-55页
        4.3.2 LM 诱导了巨噬细胞炎性体的激活第55-56页
        4.3.3 LM 诱导了巨噬细胞 caspase1 依赖的死亡第56-57页
        4.3.4 LM 激活巨噬细胞炎性体与 LLO 有关第57-58页
        4.3.5 细胞内的 LLO 激活巨噬细胞炎性体的机制第58-60页
        4.3.6 细胞外 LLO 激活巨噬细胞炎性体的机制第60-61页
        4.3.7 LM 通过 LLO 激活巨噬细胞 NLRP3 炎性体第61-62页
    4.4 讨论第62-64页
        4.4.1 LM 可诱导巨噬细胞炎性体的激活和促炎性细胞因子的表达第62页
        4.4.2 LM 诱导了巨噬细胞 caspase1 依赖的凋亡和死亡第62-63页
        4.4.3 LM 激活巨噬细胞炎性体与 LLO 有关第63页
        4.4.4 LLO 对炎性体激活的机制第63-64页
        4.4.5 LM 通过 LLO 激活巨噬细胞 NLRP3 炎性体第64页
    4.5 小结第64-65页
5 实验四 LM 感染的巨噬细胞对滋养层细胞的调节作用第65-71页
    5.1 实验材料第65-66页
        5.1.1 菌株及细胞系第65页
        5.1.2 主要试剂第65页
        5.1.3 试剂的配制第65-66页
        5.1.4 主要仪器第66页
    5.2 实验方法第66-67页
        5.2.1 LM 对巨噬细胞的感染第66页
        5.2.2 滋养层细胞侵袭实验第66-67页
        5.2.3 RT-PCR 检测细胞因子和趋化因子 mRNA 水平第67页
    5.3 实验结果第67-70页
        5.3.1 感染 LM 的巨噬细胞可调节滋养层细胞的侵袭第67-68页
        5.3.2 感染 LM 的巨噬细胞可调节滋养层细胞细胞因子的表达第68-70页
    5.4 讨论第70页
    5.5 小结第70-71页
6 结论第71-72页
参考文献第72-85页
在读期间发表的论文第85-86页
作者简介第86-87页
致谢第87-88页

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