| 摘要 | 第3-6页 |
| ABSTRACT | 第6-9页 |
| 目录 | 第10-13页 |
| 符号说明 | 第13-15页 |
| 第一章 绪论 | 第15-20页 |
| 1.1 研究背景 | 第15-18页 |
| 1.2 立题依据 | 第18-20页 |
| 第二章 脂质体膜材的合成 | 第20-29页 |
| 2.1 仪器与材料 | 第20-21页 |
| 2.1.1 主要仪器 | 第20页 |
| 2.1.2 主要材料 | 第20-21页 |
| 2.2 方法和操作 | 第21-23页 |
| 2.2.1 CHEMS的合成 | 第21-22页 |
| 2.2.2 MPEG-CHEMS的合成 | 第22页 |
| 2.2.3 F-PEG-CHEMS的合成 | 第22-23页 |
| 2.3 结果和讨论 | 第23-28页 |
| 2.3.1 CHEMS的合成 | 第23-25页 |
| 2.3.2 MPEG-CHEMS的合成 | 第25-27页 |
| 2.3.3 F-PEG-CHEMS的合成 | 第27-28页 |
| 2.4 本章小结 | 第28-29页 |
| 第三章 八聚精氨酸修饰的载ASODN脂质体的构建及体外评价 | 第29-37页 |
| 3.1 仪器与材料 | 第29-30页 |
| 3.1.1 仪器 | 第29页 |
| 3.1.2 材料 | 第29-30页 |
| 3.2 实验方法 | 第30-32页 |
| 3.2.1 硬脂酰-R8修饰脂质体的制备 | 第30页 |
| 3.2.2 粒径和Zeta电位的测定 | 第30页 |
| 3.2.3 R8-Lip/ASODN的结合率 | 第30-31页 |
| 3.2.4 R8-Lip的细胞毒性 | 第31页 |
| 3.2.5 R8-Lip对细胞摄取ASODN的促进作用 | 第31-32页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第32-35页 |
| 3.3.1 粒径和zeta电位 | 第32页 |
| 3.3.2 R8-Lip/ASODN的结合率 | 第32-33页 |
| 3.3.3 R8-Lip的细胞毒性 | 第33-34页 |
| 3.3.4 R8-Lip对ASODN细胞摄取的促进作用 | 第34-35页 |
| 3.4 本章小结 | 第35-37页 |
| 第四章 叶酸介导的ASODN脂质体复合物的制备及体外评价 | 第37-50页 |
| 4.1 仪器和材料 | 第37-38页 |
| 4.1.1 仪器 | 第37页 |
| 4.1.2 材料 | 第37-38页 |
| 4.2 方法和操作 | 第38-42页 |
| 4.2.1 脂质体的制备 | 第38-39页 |
| 4.2.2 脂质体的形态、粒径与zeta电位 | 第39页 |
| 4.2.3 载体与ASODN的结合率 | 第39页 |
| 4.2.4 叶酸配体对细胞摄取ASODN的促进作用 | 第39-40页 |
| 4.2.5 细胞摄取动力学 | 第40页 |
| 4.2.6 入胞机制 | 第40-41页 |
| 4.2.6.1 温度对摄取的影响 | 第40页 |
| 4.2.6.2 内吞抑制剂对摄取的影响 | 第40-41页 |
| 4.2.6.3 游离的叶酸对细胞摄取的影响 | 第41页 |
| 4.2.7 胞内分布考察 | 第41页 |
| 4.2.8 细胞转染 | 第41-42页 |
| 4.3 实验结果 | 第42-49页 |
| 4.3.1 脂质体的形态、粒径与zeta电位 | 第42-43页 |
| 4.3.2 载体与ASODN的结合率 | 第43页 |
| 4.3.3 叶酸配体对细胞摄取ASODN的促进作用 | 第43-44页 |
| 4.3.4 细胞摄取动力学 | 第44-45页 |
| 4.3.5 入胞机制 | 第45-48页 |
| 4.3.5.1 温度对摄取的影响 | 第45-46页 |
| 4.3.5.2 内吞抑制剂对摄取的影响 | 第46-47页 |
| 4.3.5.3 游离的叶酸对细胞摄取的影响 | 第47-48页 |
| 4.3.6 胞内分布 | 第48页 |
| 4.3.7 细胞转染 | 第48-49页 |
| 4.4 本章小结 | 第49-50页 |
| 第五章 含叶酸配体与R8的阳离子脂质体的构建及体外评价 | 第50-66页 |
| 5.1 仪器与材料 | 第50-51页 |
| 5.1.1 仪器 | 第50页 |
| 5.1.2 材料 | 第50-51页 |
| 5.2 实验方法 | 第51-55页 |
| 5.2.1 脂质体的制备 | 第51-52页 |
| 5.2.2 脂质体的形态、粒径与zeta电位 | 第52页 |
| 5.2.3 载体材料的浓度、R8浓度的选择 | 第52页 |
| 5.2.3.1 载体材料DOTAP浓度的选择 | 第52页 |
| 5.2.3.2 R8浓度的选择 | 第52页 |
| 5.2.4 脂质体对pDNA的结合率 | 第52-53页 |
| 5.2.5 脂质体复合物的细胞转染 | 第53页 |
| 5.2.6 脂质体复合物的细胞摄取 | 第53-54页 |
| 5.2.7 细胞摄取动力学 | 第54页 |
| 5.2.8 摄取机制 | 第54-55页 |
| 5.2.8.1 温度对摄取的影响 | 第54页 |
| 5.2.8.2 内吞抑制剂对摄取的影响 | 第54页 |
| 5.2.8.3 游离的叶酸对细胞摄取的影响 | 第54-55页 |
| 5.2.9 胞内分布考察 | 第55页 |
| 5.3 实验结果与讨论 | 第55-65页 |
| 5.3.1 脂质体的形态、粒径与zeta电位 | 第55-56页 |
| 5.3.2 载体材料的浓度、R8浓度的选择 | 第56-57页 |
| 5.3.2.1 载体材料DOTAP浓度的选择 | 第56-57页 |
| 5.3.2.2 R8浓度的选择 | 第57页 |
| 5.3.3 脂质体对pDNA的结合率 | 第57-58页 |
| 5.3.4 脂质体复合物的细胞转染 | 第58-59页 |
| 5.3.5 脂质体复合物的细胞摄取 | 第59-60页 |
| 5.3.6 细胞摄取动力学 | 第60-61页 |
| 5.3.7 细胞摄取机制 | 第61-64页 |
| 5.3.7.1 温度对摄取的影响 | 第61-62页 |
| 5.3.7.2 内吞抑制剂对摄取的影响 | 第62-63页 |
| 5.3.7.3 游离的叶酸对细胞摄取的影响 | 第63-64页 |
| 5.3.8 胞内分布观察 | 第64-65页 |
| 5.4 本章小结 | 第65-66页 |
| 全文总结 | 第66-68页 |
| 参考文献 | 第68-72页 |
| 综述 | 第72-81页 |
| 参考文献 | 第77-81页 |
| 致谢 | 第81-82页 |
| 攻读学位期间发表的学术论文 | 第82页 |
