摘要 | 第8-9页 |
Abstract | 第9页 |
1 前言 | 第10-17页 |
1.1 山葡萄概述 | 第10-11页 |
1.1.1 山葡萄研究进展 | 第10-11页 |
1.2 图谱构建的理论基础 | 第11-12页 |
1.3 遗传标记 | 第12-15页 |
1.4 果树遗传图谱的研究进展 | 第15-16页 |
1.5 本课题研究的目的及意义 | 第16-17页 |
2 作图群体的建立 | 第17-25页 |
2.1 研究材料与方法 | 第17-20页 |
2.1.1 作图群体亲本的选配 | 第17页 |
2.1.2 DNA的提取和质量检测 | 第17-18页 |
2.1.2.1 DNA的提取 | 第17-18页 |
2.1.2.2 检测DNA | 第18页 |
2.1.3 F1代杂种真实性的鉴定 | 第18-19页 |
2.1.3.1 SSR-PCR反应体系及其扩增 | 第18页 |
2.1.3.2 用于杂种鉴定SSR多态性引物的筛选 | 第18-19页 |
2.1.4 SSR-PCR产物的检测 | 第19-20页 |
2.1.4.1 聚丙烯酰胺凝胶电泳试剂的配制 | 第19页 |
2.1.4.2 聚丙烯酰胺凝胶电泳分离PCR产物的获得 | 第19-20页 |
2.1.4.3 银染法染色 | 第20页 |
2.2 结果与分析 | 第20-22页 |
2.2.1 DNA浓度和纯度检测 | 第20页 |
2.2.2 引物筛选结果 | 第20-21页 |
2.2.3 真假杂种鉴定结果 | 第21-22页 |
2.2.4 真杂种验证 | 第22页 |
2.3 小结 | 第22-25页 |
3 建立和优化山葡萄SSR和SRAP分子标记体系 | 第25-33页 |
3.1 材料和方法 | 第25-28页 |
3.1.1 材料 | 第25页 |
3.1.2 方法 | 第25-28页 |
3.1.2.1 建立和优化SSR-PCR的反应体系 | 第25-27页 |
3.1.2.2 SSR引物最佳退火温度的筛选 | 第27页 |
3.1.2.3 SRAP-PCR反应体系的优化 | 第27-28页 |
3.2 结果与分析 | 第28-32页 |
3.2.1 多因素组合对SSR-PCR反应体系的影响 | 第28-29页 |
3.2.2 退火温度对SSR-PCR试验结果的影响 | 第29-30页 |
3.2.3 SSR-PCR最佳体系的验证 | 第30页 |
3.2.4 多因素组合对SRAP-PCR反应体系的影响 | 第30-32页 |
3.3 小结 | 第32-33页 |
4 单性花山葡萄遗传图谱的构建 | 第33-49页 |
4.1 材料与方法 | 第33-35页 |
4.1.1 试剂和仪器 | 第33页 |
4.1.2 试验材料 | 第33页 |
4.1.3 研究方法 | 第33-35页 |
4.1.3.1 DNA提取和检测 | 第33页 |
4.1.3.2 作图群体的SSR分析 | 第33-34页 |
4.1.3.2.1 SSR多态性引物筛选 | 第33页 |
4.1.3.2.2 扩增F1群体分离位点和数据记录 | 第33-34页 |
4.1.3.3 作图群体的SRAP分析 | 第34-35页 |
4.1.3.3.1 SRAP多态性引物筛选 | 第34-35页 |
4.1.3.3.2 F1群体分离位点的扩增和数据记录 | 第35页 |
4.1.4 山葡萄遗传图谱的构建 | 第35页 |
4.2 结果分析 | 第35-44页 |
4.2.1 作图群体SSR分析结果 | 第35-36页 |
4.2.1.1 多态性SSR引物筛选 | 第35页 |
4.2.1.2 SSR引物在F1群体中扩增结果分析 | 第35-36页 |
4.2.2 作图群体SRAP分析结果 | 第36-39页 |
4.2.2.1 SRAP多态性引物筛选 | 第36-39页 |
4.2.2.2 SRAP引物在F1大群体中扩增结果 | 第39页 |
4.2.3 单性花山葡萄遗传图谱的构建 | 第39-44页 |
4.2.3.1 雌能花山葡萄'左山一'分子遗传图谱的构建 | 第39-43页 |
4.2.3.2 雄性花山葡萄'043'分子遗传图谱的构建 | 第43-44页 |
4.3 讨论 | 第44-48页 |
4.3.1 关于SSR杂合率 | 第44-47页 |
4.3.2 关于SRAP对图谱质量的影响 | 第47-48页 |
4.4 小结 | 第48-49页 |
5 结论 | 第49-50页 |
参考文献 | 第50-56页 |
附录 | 第56-57页 |
致谢 | 第57页 |