| 摘要 | 第3-4页 |
| ABSTRACT | 第4-5页 |
| 目录 | 第6-9页 |
| 第一章 绪论 | 第9-21页 |
| 1.1 引言 | 第9页 |
| 1.2 量子点概述 | 第9-10页 |
| 1.2.1 量子点的基本性质 | 第9-10页 |
| 1.2.2 量子点的发光机理 | 第10页 |
| 1.3 合成量子点的方法 | 第10-14页 |
| 1.3.1 有机相制备量子点 | 第11-12页 |
| 1.3.2 巯基水相法 | 第12-14页 |
| 1.3.3 水热法 | 第14页 |
| 1.4 量子点的应用 | 第14-17页 |
| 1.4.1 作为单向荧光探针在分析检测中的应用 | 第14-15页 |
| 1.4.2 基于量子点的荧光“开关”探针 | 第15-17页 |
| 1.5 DNA靶向分子与DNA作用方式 | 第17-19页 |
| 1.6 所选DNA嵌插剂配体的介绍 | 第19页 |
| 1.7 论文的主要研究内容 | 第19-20页 |
| 1.8 研究目的及意义 | 第20-21页 |
| 第二章 在水溶液中制备巯基乙胺-ZnSe量子点 | 第21-26页 |
| 2.1 试剂与仪器 | 第21页 |
| 2.1.1 试剂 | 第21页 |
| 2.1.2 实验仪器 | 第21页 |
| 2.2 CA-ZnSe量子点的水相制备 | 第21-22页 |
| 2.3 CA-ZnSe量子点的表征 | 第22-23页 |
| 2.3.1 透射电子显微镜成像(TEM) | 第22页 |
| 2.3.2 荧光光谱和紫外光谱的检测 | 第22-23页 |
| 2.3.3 荧光量子产率的计算 | 第23页 |
| 2.4 结果与讨论 | 第23-25页 |
| 2.4.1 透射电子显微镜成像(TEM) | 第24页 |
| 2.4.2 ZnSe量子点的光谱表征 | 第24-25页 |
| 2.4.3 CA-ZnSe量子点的荧光量子产率 | 第25页 |
| 2.5 本章小结 | 第25-26页 |
| 第三章 hsDNA-ZnSe QDs-AO相互作用的荧光光谱研究 | 第26-30页 |
| 3.1 试剂与仪器 | 第26页 |
| 3.1.1 试剂 | 第26页 |
| 3.1.2 实验仪器 | 第26页 |
| 3.2 实验方法 | 第26-27页 |
| 3.2.1 hs-DNA与CA-ZnSe量子点的相互作用 | 第26页 |
| 3.2.2 AO与hs-DNA/CA-ZnSe QDs复合体系之间的相互作用 | 第26-27页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第27-28页 |
| 3.3.1 hs-DNA与CA-ZnSe量子点的相互作用 | 第27-28页 |
| 3.3.2 AO与hs-DNA/CA-ZnSe QDs复合体系之间的相互作用 | 第28页 |
| 3.4 本章小结 | 第28-30页 |
| 第四章 hs-DNA/CA-ZnSe QDs/AO机理研究 | 第30-42页 |
| 4.1 hs-DNA对CA-ZnSe QDs荧光猝灭阶段的机理研究 | 第30-31页 |
| 4.1.1 hs-DNA对CA-ZnSe QDs紫外吸收光谱的影响 | 第30页 |
| 4.1.2 盐效应实验 | 第30页 |
| 4.1.3 猝灭类型的判断、结合参数的计算 | 第30-31页 |
| 4.2 AO对hs-DNA/CA-ZnSe QDs复合体系荧光恢复阶段的机理研究 | 第31-32页 |
| 4.2.1 hs-DNA/CA-ZnSe QDs与AO相互作用的紫外-可见吸收光谱 | 第31页 |
| 4.2.2 KI猝灭实验 | 第31页 |
| 4.2.3 hs-DNA对AO荧光光谱的影响 | 第31-32页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第32-40页 |
| 4.3.1 hs-DNA对CA-ZnSe QDs紫外吸收光谱的影响 | 第32-33页 |
| 4.3.2 盐效应实验 | 第33-34页 |
| 4.3.3 hs-DNA对CA-ZnSe QDs猝灭类型的判断以及两者结合参数的计算 | 第34-37页 |
| 4.3.4 hs-DNA/CA-ZnSe QDs与AO相互作用的紫外-可见吸收光谱 | 第37-38页 |
| 4.3.5 KI猝灭实验 | 第38-39页 |
| 4.3.6 hs-DNA对AO荧光光谱的影响 | 第39-40页 |
| 4.4 本章小结 | 第40-42页 |
| 第五章 反应条件的优化及样品测定 | 第42-49页 |
| 5.1 反应条件的优化 | 第42页 |
| 5.1.1 荧光猝灭阶段反应时间的优化 | 第42页 |
| 5.1.2 荧光恢复阶段反应时间的优化 | 第42页 |
| 5.1.3 反应体系pH的优化 | 第42页 |
| 5.1.4 量子点浓度对反应体系的影响 | 第42页 |
| 5.1.5 DNA浓度对反应体系的影响 | 第42页 |
| 5.2 吖啶橙的检测 | 第42-43页 |
| 5.2.1 标准曲线的绘制 | 第42-43页 |
| 5.2.2 干扰物质的影响 | 第43页 |
| 5.2.3 实际样品的测定 | 第43页 |
| 5.3 结果与讨论 | 第43-48页 |
| 5.3.1 荧光猝灭阶段反应时间的优化 | 第43-44页 |
| 5.3.2 荧光恢复阶段反应时间的优化 | 第44页 |
| 5.3.3 反应体系pH的优化 | 第44-45页 |
| 5.3.4 量子点浓度对反应体系的影响 | 第45页 |
| 5.3.5 hs-DNA浓度对反应体系荧光强度的影响 | 第45-46页 |
| 5.3.6 标准曲线的绘制 | 第46页 |
| 5.3.7 干扰物质的影响 | 第46-47页 |
| 5.3.8 实际样品的测定 | 第47-48页 |
| 5.4 本章小结 | 第48-49页 |
| 结论与展望 | 第49-51页 |
| 结论 | 第49页 |
| 展望 | 第49-51页 |
| 参考文献 | 第51-64页 |
| 攻读硕士期间科研成果 | 第64-65页 |
| 致谢 | 第65页 |
