摘要 | 第6-9页 |
Abstract | 第9-11页 |
第一章 绪论 | 第12-15页 |
1.1 课题来源、研究的目的和意义 | 第12-13页 |
1.2 国内外研究概况 | 第13-14页 |
1.3 论文的主要研究内容 | 第14-15页 |
第二章 材料与方法 | 第15-28页 |
2.1 研究资料及仪器设备 | 第15-21页 |
2.1.1 组织标本 | 第15页 |
2.1.2 ESCC细胞株 | 第15-16页 |
2.1.3 主要试剂 | 第16-21页 |
2.1.3.1 石蜡切片免疫组化实验试剂 | 第16-17页 |
2.1.3.2 Western blot实验试剂及来源 | 第17-20页 |
2.1.3.3 细胞培养 | 第20-21页 |
2.1.4 实验仪器 | 第21页 |
2.2 实验流程与方法 | 第21-28页 |
2.2.1 ESCC 手术切除的病理组织石蜡切片的免疫组化实验方法 | 第21-23页 |
2.2.2 Western blot实验 | 第23-25页 |
2.2.3 ESCC细胞株的培养 | 第25页 |
2.2.4 细胞转染 | 第25页 |
2.2.5 细胞蛋白质的提取及含量测定 | 第25页 |
2.2.6 流式细胞仪 (FCM)检测细胞周期分布 | 第25-26页 |
2.2.7 CCK-8 法检测细胞增殖活性 | 第26页 |
2.2.8 克隆形成试验 | 第26页 |
2.2.9 Tunel实验 | 第26-27页 |
2.2.10 统计学处理 | 第27-28页 |
第三章 结果 | 第28-42页 |
3.1 SYF2在人食管鳞癌组织中的表达及临床意义 | 第28-35页 |
3.1.1 Western blot检测SYF2在8对人食管鳞癌和癌旁新鲜组织中的表达 | 第28-29页 |
3.1.2 免疫组化检测SYF2在人ESCC及癌旁石蜡切片组织中的表达 | 第29-30页 |
3.1.3 SYF2和Ki-67在食管鳞癌中表达的相关性分析 | 第30-31页 |
3.1.4 SYF2的蛋白表达水平与不同临床病理参数的关系 | 第31-32页 |
3.1.5 预后分析 | 第32-35页 |
3.1.5.1 单因素生存分析 | 第32-33页 |
3.1.5.2 对ESCC中SYF2生存率的评价 | 第33-34页 |
3.1.5.3 Cox比例风险模型多因素生存分析 | 第34-35页 |
3.2 SYF2在ESCC细胞增殖中的作用 | 第35-39页 |
3.2.1 血清饥饿释放对食管鳞癌细胞株ECA109和TE1细胞周期的影响 | 第35-37页 |
3.2.2 干扰SYF2会抑制ESCC细胞的增殖 | 第37-39页 |
3.3 SYF2对于ESCC细胞对化疗药物敏感性的影响 | 第39-42页 |
第四章 讨论 | 第42-44页 |
第五章 结论 | 第44-45页 |
参考文献 | 第45-48页 |
英文缩写词表 | 第48-50页 |
综述 | 第50-58页 |
综述参考文献 | 第55-58页 |
在攻读硕士学位期间公开发表的论文与参加的项目 | 第58-60页 |
致谢 | 第60-61页 |
附录:攻读学位期间获得的主要荣誉 | 第61-62页 |