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SYF2在食管鳞癌中的表达及临床意义

摘要第6-9页
Abstract第9-11页
第一章 绪论第12-15页
    1.1 课题来源、研究的目的和意义第12-13页
    1.2 国内外研究概况第13-14页
    1.3 论文的主要研究内容第14-15页
第二章 材料与方法第15-28页
    2.1 研究资料及仪器设备第15-21页
        2.1.1 组织标本第15页
        2.1.2 ESCC细胞株第15-16页
        2.1.3 主要试剂第16-21页
            2.1.3.1 石蜡切片免疫组化实验试剂第16-17页
            2.1.3.2 Western blot实验试剂及来源第17-20页
            2.1.3.3 细胞培养第20-21页
        2.1.4 实验仪器第21页
    2.2 实验流程与方法第21-28页
        2.2.1 ESCC 手术切除的病理组织石蜡切片的免疫组化实验方法第21-23页
        2.2.2 Western blot实验第23-25页
        2.2.3 ESCC细胞株的培养第25页
        2.2.4 细胞转染第25页
        2.2.5 细胞蛋白质的提取及含量测定第25页
        2.2.6 流式细胞仪 (FCM)检测细胞周期分布第25-26页
        2.2.7 CCK-8 法检测细胞增殖活性第26页
        2.2.8 克隆形成试验第26页
        2.2.9 Tunel实验第26-27页
        2.2.10 统计学处理第27-28页
第三章 结果第28-42页
    3.1 SYF2在人食管鳞癌组织中的表达及临床意义第28-35页
        3.1.1 Western blot检测SYF2在8对人食管鳞癌和癌旁新鲜组织中的表达第28-29页
        3.1.2 免疫组化检测SYF2在人ESCC及癌旁石蜡切片组织中的表达第29-30页
        3.1.3 SYF2和Ki-67在食管鳞癌中表达的相关性分析第30-31页
        3.1.4 SYF2的蛋白表达水平与不同临床病理参数的关系第31-32页
        3.1.5 预后分析第32-35页
            3.1.5.1 单因素生存分析第32-33页
            3.1.5.2 对ESCC中SYF2生存率的评价第33-34页
            3.1.5.3 Cox比例风险模型多因素生存分析第34-35页
    3.2 SYF2在ESCC细胞增殖中的作用第35-39页
        3.2.1 血清饥饿释放对食管鳞癌细胞株ECA109和TE1细胞周期的影响第35-37页
        3.2.2 干扰SYF2会抑制ESCC细胞的增殖第37-39页
    3.3 SYF2对于ESCC细胞对化疗药物敏感性的影响第39-42页
第四章 讨论第42-44页
第五章 结论第44-45页
参考文献第45-48页
英文缩写词表第48-50页
综述第50-58页
    综述参考文献第55-58页
在攻读硕士学位期间公开发表的论文与参加的项目第58-60页
致谢第60-61页
附录:攻读学位期间获得的主要荣誉第61-62页

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