| 摘要 | 第6-8页 |
| Abstract | 第8-10页 |
| 第一章 文献综述 | 第11-21页 |
| 1.1 土地盐渍化概述 | 第11页 |
| 1.2 盐胁迫对植物的伤害 | 第11-15页 |
| 1.2.1 盐胁迫诱导的离子伤害 | 第11-12页 |
| 1.2.2 盐胁迫诱导的渗透伤害 | 第12页 |
| 1.2.3 盐胁迫诱导的活性氧代谢 | 第12-13页 |
| 1.2.4 盐胁迫诱导的膜系统伤害 | 第13-14页 |
| 1.2.5 盐胁迫诱导的光合伤害 | 第14页 |
| 1.2.6 盐胁迫诱导的叶绿素荧光的变化 | 第14-15页 |
| 1.3 植物对盐胁迫的适应 | 第15-17页 |
| 1.3.1 渗透调节物质与植物的抗盐性 | 第15-16页 |
| 1.3.2 抗氧化系统与植物的抗盐性 | 第16页 |
| 1.3.3 不饱和脂肪酸与植物的抗盐性 | 第16-17页 |
| 1.4 ω-3 脂肪酸去饱和酶概况 | 第17-18页 |
| 1.4.1 ω-3 脂肪酸去饱和酶定义及分类 | 第17-18页 |
| 1.4.2 ω-3 脂肪酸去饱和酶的生理功能 | 第18页 |
| 1.5 花生耐盐研究进展 | 第18-19页 |
| 1.6 转录组研究概况 | 第19页 |
| 1.7 研究的目的和意义 | 第19-21页 |
| 第二章 盐处理及恢复对花生幼苗生理特性的影响 | 第21-33页 |
| 2.1 试验材料 | 第21页 |
| 2.1.1 试验材料 | 第21页 |
| 2.1.2 材料处理 | 第21页 |
| 2.2 试验方法 | 第21-24页 |
| 2.2.1 盐处理及恢复条件下花生幼苗鲜干重的测定 | 第21页 |
| 2.2.2 盐处理及恢复条件下花生幼苗膜脂含量的测定 | 第21-22页 |
| 2.2.3 盐处理及恢复条件下花生幼苗各种荧光参数的测定 | 第22-23页 |
| 2.2.4 盐处理及恢复条件下花生幼苗光PSI活性的测定 | 第23页 |
| 2.2.5 盐处理及恢复条件下花生幼苗O_2~?·和H_2O_2的测定 | 第23页 |
| 2.2.6 盐处理及恢复条件下花生幼苗抗氧化酶活性的测定 | 第23-24页 |
| 2.2.7 盐处理及恢复条件下花生幼苗丙二醛（MDA）含量的测定 | 第24页 |
| 2.2.8 数据统计分析 | 第24页 |
| 2.3 试验结果 | 第24-30页 |
| 2.3.1 盐处理及恢复处理对花生幼苗表型的影响 | 第24-25页 |
| 2.3.2 盐处理及恢复处理对花生幼苗生物量的影响 | 第25-26页 |
| 2.3.3 盐胁迫及恢复处理对花生幼苗膜脂含量的影响 | 第26-27页 |
| 2.3.4 盐处理及恢复处理对花生幼苗荧光的影响 | 第27-28页 |
| 2.3.5 盐处理及恢复处理对花生幼苗PSI活性的影响 | 第28页 |
| 2.3.6 盐处理及恢复处理对花生幼苗O_2~?·和H_2O_2含量及抗氧化酶活性的影响 | 第28-30页 |
| 2.3.7 盐处理及恢复处理对花生幼苗MDA含量的影响 | 第30页 |
| 2.4 讨论 | 第30-33页 |
| 第三章 盐处理及恢复条件下花生幼苗转录组测序分析 | 第33-52页 |
| 3.1 试验材料 | 第33页 |
| 3.1.1 试验材料 | 第33页 |
| 3.1.2 材料处理 | 第33页 |
| 3.2 试验方法 | 第33-36页 |
| 3.2.1 植物总RNA的提取 | 第33-34页 |
| 3.2.2 文库构建和Illumina测序 | 第34页 |
| 3.2.3 RNA-seq数据预处理和质量控制 | 第34-35页 |
| 3.2.4 组装统计及差异表达基因的获得 | 第35页 |
| 3.2.5 基因功能注释 | 第35-36页 |
| 3.2.6 荧光定量PCR验证转录组数据的可靠性 | 第36页 |
| 3.3 试验结果与分析 | 第36-49页 |
| 3.3.1 测序结果统计分析 | 第36-37页 |
| 3.3.2 GO功能注释分析 | 第37-39页 |
| 3.3.3 差异基因个数统计 | 第39页 |
| 3.3.4 脂代谢通路分析 | 第39-40页 |
| 3.3.5 脂代谢相关的差异基因 | 第40-41页 |
| 3.3.6 光合相关的差异基因 | 第41-48页 |
| 3.3.7 ROS清除系统的差异基因 | 第48页 |
| 3.3.8 荧光定量PCR验证结果 | 第48-49页 |
| 3.4 讨论 | 第49-52页 |
| 第四章 ω-3 脂肪酸去饱和酶关键基因CL8534.Conting6和CL8534.Conting7的克隆 | 第52-59页 |
| 4.1 试验材料 | 第52页 |
| 4.1.1 试验材料 | 第52页 |
| 4.1.2 材料处理 | 第52页 |
| 4.2 试验方法 | 第52-55页 |
| 4.2.1 植物总RNA的提取 | 第52页 |
| 4.2.2 cDNA的合成 | 第52-53页 |
| 4.2.3 目的基因的引物设计 | 第53页 |
| 4.2.4 基因全长的克隆 | 第53-54页 |
| 4.2.5 对已经克隆的基因序列验证其基因表达 | 第54页 |
| 4.2.6 试剂盒法检测 ω-3 脂肪酸去饱和酶的活性 | 第54-55页 |
| 4.3 试验结果 | 第55-58页 |
| 4.3.1 CL8534.Conting6基因序列的获得 | 第55-57页 |
| 4.3.2 对已获得的目的片段基因表达的验证 | 第57页 |
| 4.3.3 ω-3 脂肪酸去饱和酶活性测定 | 第57-58页 |
| 4.4 讨论 | 第58-59页 |
| 参考文献 | 第59-66页 |
| 致谢 | 第66-67页 |
| 攻读硕士学位期间发表的论文 | 第67页 |
