| 符号说明 | 第4-7页 |
| 中文摘要 | 第7-8页 |
| Abstract | 第8-9页 |
| 1 引言 | 第10-20页 |
| 1.1 元宝枫等彩叶植物呈色机理 | 第10-11页 |
| 1.2 花色苷研究进展 | 第11-19页 |
| 1.2.1 花色苷简介 | 第11-12页 |
| 1.2.2 花色苷合成途径 | 第12-14页 |
| 1.2.3 花色苷关键基因 | 第14-17页 |
| 1.2.4 花色素苷生物合成中的转录因子 | 第17-19页 |
| 1.4 本研究目的意义 | 第19-20页 |
| 2 材料与方法 | 第20-31页 |
| 2.1 试验材料 | 第20-23页 |
| 2.1.1 植物材料 | 第20页 |
| 2.1.2 生化试剂 | 第20页 |
| 2.1.3 试验仪器 | 第20-21页 |
| 2.1.4 溶液配制 | 第21-22页 |
| 2.1.5 引物合成 | 第22-23页 |
| 2.2 试验方法 | 第23-31页 |
| 2.2.1 总RNA提取 | 第23-24页 |
| 2.2.2 RT-PCR | 第24-29页 |
| 2.2.3 PCR产物电泳检测 | 第29页 |
| 2.2.4 PCR产物凝胶回收 | 第29-30页 |
| 2.2.5 连接载体 | 第30页 |
| 2.2.6 转化 | 第30-31页 |
| 2.2.7 阳性克隆鉴定 | 第31页 |
| 2.2.8 测序结果处理 | 第31页 |
| 3 试验结果与分析 | 第31-50页 |
| 3.1 RNA提取结果 | 第31-33页 |
| 3.2 元宝枫WD40转录因子的分离 | 第33-40页 |
| 3.2.1 PCR扩增 | 第33-34页 |
| 3.2.2 测序结果与序列分析 | 第34-38页 |
| 3.2.3 蛋白理化性质分析 | 第38页 |
| 3.2.4 WD40蛋白跨膜结构域与二级结构预测 | 第38-40页 |
| 3.2.5 进化树分析 | 第40页 |
| 3.3 元宝枫CHS基因的分离 | 第40-47页 |
| 3.3.1 PCR扩增 | 第40-41页 |
| 3.3.2 测序结果与序列分析 | 第41-45页 |
| 3.3.3 CHS蛋白质理化性质分析 | 第45页 |
| 3.3.4 蛋白质跨膜结构与二级结构预测 | 第45-46页 |
| 3.3.5 氨基酸序列进化分析 | 第46-47页 |
| 3.4 元宝枫F3H基因片段的分离 | 第47-50页 |
| 3.4.1 电泳结果 | 第47-48页 |
| 3.4.2 测序结果与分析 | 第48-50页 |
| 4 讨论 | 第50-53页 |
| 4.1 多酚植物总RNA的提取方法 | 第50页 |
| 4.2 同源基因的分离 | 第50-51页 |
| 4.3 元宝枫叶片WD40、CHS、F3H基因与花色素苷合成的关系 | 第51-52页 |
| 4.4 需要进一步研究的问题 | 第52页 |
| 4.5 植物叶色基因工程改良展望 | 第52-53页 |
| 5 结论 | 第53-54页 |
| 参考文献 | 第54-64页 |
| 附录 | 第64-68页 |
| 附录A 元宝枫叶片花色苷关键基因序列 | 第64-66页 |
| 附录B 元宝枫叶片花色昔关键基因编码氨基酸多重序列比对 | 第66-68页 |
| 致谢 | 第68-69页 |
| 攻读硕士期间发表的学术论文 | 第69页 |