| 摘要 | 第7-8页 |
| 文献综述 | 第8-13页 |
| 1 Musclin发现及研究进展 | 第8-11页 |
| 1.1 Musclin的发现及功能概述 | 第8页 |
| 1.2 Musclin基因结构 | 第8-9页 |
| 1.3 Musclin与机体代谢 | 第9-10页 |
| 1.4 影响Musclin基因表达的因素 | 第10-11页 |
| 2 Musclin基因启动子功能研究进展 | 第11-13页 |
| 本研究的立项依据与研究意义 | 第13-14页 |
| 试验一 葡萄糖对绵羊Musclin基因启动子活性的影响 | 第14-34页 |
| 1.1 材料与方法 | 第14-24页 |
| 1.1.1 试验用细胞与载体 | 第14页 |
| 1.1.2 试验用试剂和耗材 | 第14页 |
| 1.1.3 引物合成和数据分析 | 第14页 |
| 1.1.4 试验仪器 | 第14-15页 |
| 1.1.5 试验用试剂的配制 | 第15-16页 |
| 1.1.6 试验基本方法 | 第16-24页 |
| 1.2 结果与分析 | 第24-31页 |
| 1.2.1 Musclin基因启动子真核表达载体MusclinPro~W-EGFP酶切鉴定结果 | 第24-25页 |
| 1.2.2 MusclinPro~W-EGFP在C2C12细胞中转染效率检测 | 第25-26页 |
| 1.2.3 经转染C2C12细胞在分化与未分化状态下EGFP mRNA的表达 | 第26-27页 |
| 1.2.4 C2C12细胞转染后的RNA提取结果 | 第27-28页 |
| 1.2.5 EGFP及GAPDH基因mRNA的PCR扩增与溶解曲线 | 第28页 |
| 1.2.6 不同浓度葡萄糖对EGFP mRNA表达的影响 | 第28-31页 |
| 1.3 讨论 | 第31-34页 |
| 1.3.1 分化对绵羊Musclin启动子活性的影响 | 第31-32页 |
| 1.3.2 葡萄糖对绵羊Musclin启动子活性的影响 | 第32页 |
| 1.3.3 转染效率的提高 | 第32-33页 |
| 1.3.4 实时荧光定量PCR的优化 | 第33-34页 |
| 试验二 胰岛素和地塞米松对绵羊Musclin基因启动子活性的影响 | 第34-44页 |
| 2.1 材料与方法 | 第34-36页 |
| 2.1.1 试验用细胞与载体 | 第34页 |
| 2.1.2 试验用试剂和耗材 | 第34页 |
| 2.1.3 引物合成、序列分析以及数据统计 | 第34页 |
| 2.1.4 仪器与设备 | 第34页 |
| 2.1.5 试验用试剂的配制 | 第34页 |
| 2.1.6 试验方法 | 第34-36页 |
| 2.2 结果与分析 | 第36-42页 |
| 2.2.1 不同浓度胰岛素对EGFP mRNA表达的影响 | 第36-40页 |
| 2.2.2 不同浓度地塞米松对EGFP mRNA表达的影响 | 第40-42页 |
| 2.3 讨论 | 第42-44页 |
| 2.3.1 胰岛素对绵羊Musclin启动子活性的影响 | 第42页 |
| 2.3.2 地塞米松对绵羊Musclin启动子活性的影响 | 第42-44页 |
| 全文结论 | 第44-45页 |
| 参考文献 | 第45-49页 |
| Abstract | 第49-50页 |
| 致谢 | 第51页 |
