| 英文缩写词表 | 第1-9页 |
| 摘要 | 第9-11页 |
| Abstract | 第11-13页 |
| 第1章 绪论 | 第13-19页 |
| ·脉冲电磁场治疗骨质疏松症的现状 | 第13-15页 |
| ·电磁场促进骨形成研究进展 | 第13-14页 |
| ·电磁场治疗骨质疏松机理研究进展 | 第14-15页 |
| ·初级纤毛结构与功能 | 第15-17页 |
| ·初级纤毛的基本结构及其发生过程 | 第15-16页 |
| ·初级纤毛与信号通路 | 第16-17页 |
| ·BMP-Smad1/5/8 信号通路与骨形成的关系 | 第17页 |
| ·本课题的研究内容及意义 | 第17-19页 |
| 第2章 骨细胞和成骨细胞的比较研究 | 第19-27页 |
| ·引言 | 第19页 |
| ·材料与仪器 | 第19-20页 |
| ·实验动物 | 第19页 |
| ·主要试剂 | 第19页 |
| ·主要仪器 | 第19-20页 |
| ·实验方法 | 第20-23页 |
| ·大鼠颅骨成骨细胞的分离与培养 | 第20页 |
| ·骨细胞的分离培养 | 第20-21页 |
| ·HE染色分析 | 第21页 |
| ·Ι 型胶原的免疫组化染色 | 第21页 |
| ·骨钙素（OC）免疫荧光染色 | 第21-22页 |
| ·ALP的偶氮偶合法染色 | 第22页 |
| ·ALP活性测定 | 第22页 |
| ·Western blot分析 | 第22页 |
| ·统计学处理 | 第22-23页 |
| ·结果与分析 | 第23-26页 |
| ·成骨细胞与骨细胞的镜下形态 | 第23页 |
| ·成骨细胞与骨细胞HE染色后的形态 | 第23-24页 |
| ·COL-Ι 免疫组织化学染色结果 | 第24页 |
| ·骨钙素（OC）免疫荧光染色结果 | 第24页 |
| ·碱性磷酸酶（ALP）组织化学染色结果 | 第24-25页 |
| ·碱性磷酸酶的活性检测的结果 | 第25页 |
| ·Western blotting结果 | 第25-26页 |
| ·讨论 | 第26-27页 |
| 第3章 脉冲电磁场通过BMP-Smad信号通路促进骨形成 | 第27-34页 |
| ·引言 | 第27页 |
| ·材料与仪器 | 第27-28页 |
| ·实验动物 | 第27页 |
| ·主要试剂 | 第27页 |
| ·主要实验仪器 | 第27-28页 |
| ·实验方法 | 第28-29页 |
| ·成骨细胞的分离培养 | 第28页 |
| ·实验分组与处理 | 第28页 |
| ·Western blotting | 第28页 |
| ·免疫荧光染色 | 第28页 |
| ·碱性磷酸酶（ALP）活性的测定 | 第28-29页 |
| ·茜素红钙化结节染色 | 第29页 |
| ·统计学处理 | 第29页 |
| ·结果与分析 | 第29-32页 |
| ·PEMFs对BMP-2 和Smad1/5/8 及其磷酸化水平的影响 | 第29-30页 |
| ·PEMFs对p-Smad1/5/8 发生核转位的影响 | 第30页 |
| ·BMP信号通路阻断剂对成骨细胞ALP活性的影响 | 第30-31页 |
| ·BMP信号通路阻断剂对成骨相关蛋白表达量的影响 | 第31-32页 |
| ·BMP信号途径阻断剂对成骨细胞成熟矿化的影响 | 第32页 |
| ·讨论 | 第32-34页 |
| 第4章 脉冲电磁场通过初级纤毛激活BMP-Smad信号通路 | 第34-42页 |
| ·引言 | 第34页 |
| ·材料与仪器 | 第34-35页 |
| ·实验动物 | 第34页 |
| ·主要药品与试剂 | 第34页 |
| ·实验仪器 | 第34-35页 |
| ·实验方法 | 第35-37页 |
| ·成骨细胞的分离与培养 | 第35页 |
| ·初级纤毛免疫染色 | 第35页 |
| ·成骨细胞内IFT88的RNA干扰 | 第35-36页 |
| ·Real Time RT-PCR分析 | 第36页 |
| ·western blot检测 | 第36页 |
| ·统计学处理 | 第36-37页 |
| ·结果与分析 | 第37-41页 |
| ·初级纤毛干扰结果 | 第37页 |
| ·初级纤毛干扰后BMP-2 和Smad1/5/8 及磷酸化水平的变化 | 第37-38页 |
| ·初级纤毛干扰后p-Smad1/5/8 发生核转位的变化 | 第38-39页 |
| ·初级纤毛被干扰前后BMPRs表达量的变化 | 第39-40页 |
| ·初级纤毛干扰前后BMPR与初级纤毛的定位结果 | 第40-41页 |
| ·讨论 | 第41-42页 |
| 第5章 脉冲电磁场促进成骨细胞成熟分化依赖定位于初级纤毛中的BMPRⅡ | 第42-48页 |
| ·引言 | 第42页 |
| ·材料与仪器 | 第42-43页 |
| ·实验动物 | 第42页 |
| ·主要药品与试剂 | 第42页 |
| ·实验仪器 | 第42-43页 |
| ·实验方法 | 第43-44页 |
| ·成骨细胞的分离与培养 | 第43页 |
| ·BMPRⅡ的RNA干扰 | 第43页 |
| ·Real Time RT-PCR分析 | 第43页 |
| ·western blot检测结果 | 第43-44页 |
| ·碱性磷酸酶（ALP）活性的测定 | 第44页 |
| ·茜素红钙化结节染色 | 第44页 |
| ·统计学处理 | 第44页 |
| ·结果与分析 | 第44-47页 |
| ·BMPRⅡ干扰评估 | 第44-45页 |
| ·BMPRII干扰后碱性磷酸酶（ALP）活性变化 | 第45页 |
| ·BMPRII干扰后RUNX-2、Osx、COL-Ι 蛋白的变化 | 第45-46页 |
| ·BMPRII干扰后钙化结节形成的变化 | 第46-47页 |
| ·讨论 | 第47-48页 |
| 结论 | 第48-49页 |
| 参考文献 | 第49-56页 |
| 致谢 | 第56-57页 |
| 附录A：攻读学位期间所发表的学术论文目录 | 第57页 |
