新型药物载体γ-聚谷氨酸的制备研究
| 摘要 | 第1-10页 |
| ABSTRACT | 第10-13页 |
| 第一章 文献综述 | 第13-32页 |
| ·引言 | 第13-14页 |
| ·γ-聚谷氨酸的用途 | 第14-20页 |
| ·γ-聚谷氨酸的医药用途 | 第14-19页 |
| ·作为药物的缓释靶向载体 | 第14-18页 |
| ·作为外用药物的载体 | 第18-19页 |
| ·γ-聚谷氨酸的农用 | 第19-20页 |
| ·作为土壤植物的保水剂 | 第19-20页 |
| ·作为农药、肥料的缓释剂 | 第20页 |
| ·γ-聚谷氨酸的其它用途 | 第20页 |
| ·γ-聚谷氨酸的生产方法 | 第20-23页 |
| ·化学合成法 | 第20-21页 |
| ·传统的多肽合成法 | 第20-21页 |
| ·二聚体缩聚法 | 第21页 |
| ·提取法 | 第21页 |
| ·微生物的发酵法 | 第21-22页 |
| ·生物聚合生成γ-PGA的机理 | 第22-23页 |
| ·酶转化法 | 第23页 |
| ·γ-聚谷氨酸生产菌的介绍 | 第23-26页 |
| ·本论文研究的意义和主要内容 | 第26-32页 |
| 第二章 高产γ-聚谷氨酸菌种的筛选和鉴定 | 第32-41页 |
| ·引言 | 第32页 |
| ·实验仪器和试剂 | 第32-33页 |
| ·实验仪器 | 第32-33页 |
| ·实验试剂 | 第33页 |
| ·实验方法 | 第33-36页 |
| ·培养基 | 第33-34页 |
| ·菌种分离方法 | 第34页 |
| ·土样采集 | 第34页 |
| ·富集培养 | 第34页 |
| ·菌种分离 | 第34页 |
| ·菌种的筛选方法 | 第34-35页 |
| ·平板初选 | 第34页 |
| ·摇瓶复选 | 第34-35页 |
| ·菌种的鉴定方法 | 第35-36页 |
| ·VP实验方法 | 第35页 |
| ·甲基红实验的方法 | 第35页 |
| ·吲哚的生成 | 第35页 |
| ·厌氧培养 | 第35页 |
| ·H_2S的生成 | 第35-36页 |
| ·实验结果与讨论 | 第36-39页 |
| ·高产γ-PGA菌株 | 第36页 |
| ·菌株的形态和生物学性质 | 第36-38页 |
| ·NX-2菌在不同NaCl浓度培养基中的生长情况 | 第38-39页 |
| ·本章小结 | 第39-41页 |
| 第三章 利用枯草芽孢杆菌高效生产γ-聚谷氨酸 | 第41-61页 |
| ·引言 | 第41-42页 |
| ·实验仪器和试剂 | 第42-43页 |
| ·实验仪器 | 第42页 |
| ·实验试剂 | 第42-43页 |
| ·实验菌种 | 第43页 |
| ·实验方法 | 第43-45页 |
| ·菌种的培养 | 第43-45页 |
| ·斜面活化 | 第43-44页 |
| ·种子培养 | 第44页 |
| ·发酵培养 | 第44-45页 |
| ·发酵过程的检测 | 第45页 |
| ·实验结果与讨论 | 第45-54页 |
| ·不同碳源对PGA生产的影响 | 第45-48页 |
| ·不同氮源对PGA生产的影响 | 第48-51页 |
| ·谷氨酸浓度对γ-PGA生成的影响 | 第51-52页 |
| ·振荡培养的时间、转速对γ-PGA生成的影响 | 第52-53页 |
| ·培养温度对PGA生产的影响 | 第53页 |
| ·种子液对PGA生产的影响 | 第53-54页 |
| ·PGA的提取和纯化 | 第54-57页 |
| ·γ-PGA有机溶剂沉淀法 | 第54-55页 |
| ·化学沉淀法 | 第55-56页 |
| ·膜分离法 | 第56-57页 |
| ·本章小结 | 第57-61页 |
| 第四章 低分子量PGA的制备及其表征分析 | 第61-82页 |
| ·引言 | 第61-63页 |
| ·实验仪器和试剂 | 第63-64页 |
| ·实验仪器 | 第63页 |
| ·实验试剂 | 第63-64页 |
| ·实验方法 | 第64-67页 |
| ·低分子量PGA的制备方法 | 第64-65页 |
| ·聚谷氨酸降解影响因素考察 | 第64-65页 |
| ·聚谷氨酸降解条件的优化 | 第65页 |
| ·低分子量PGA的分离纯化方法 | 第65-67页 |
| ·阴离子交换树脂柱吸附分离法 | 第65-66页 |
| ·超滤膜分离法 | 第66-67页 |
| ·聚谷氨酸分子量的测定方法 | 第67页 |
| ·γ-PGA的表征分析 | 第67页 |
| ·实验结果与讨论 | 第67-77页 |
| ·低分子量γ-PGA的制备 | 第67-70页 |
| ·降解条件对低分子量聚谷氨酸制备的影响 | 第67-68页 |
| ·聚谷氨酸降解优化条件 | 第68-70页 |
| ·分离纯化方法对低分子量γ-PGA的分离影响 | 第70-73页 |
| ·离子交换法对低分子量γ-PGA的分离纯化影响 | 第70-71页 |
| ·超滤膜分离对低分子量γ-PGA的分离纯化影响 | 第71-73页 |
| ·PGA纯品制备 | 第73页 |
| ·γ-PGA分子量电泳法测定的影响因素 | 第73-75页 |
| ·支持介质对γ-PGA分子量电泳测定的影响 | 第74-75页 |
| ·染色剂对γ-PGA分子量电泳测定的影响 | 第75页 |
| ·γ-PGA的表征分析 | 第75-77页 |
| ·γ-PGA单体组成分析 | 第75-76页 |
| ·元素分析 | 第76页 |
| ·紫外光谱分析 | 第76页 |
| ·红外图谱分析 | 第76-77页 |
| ·核磁共振分析 | 第77页 |
| ·本章小结 | 第77-82页 |
| 第五章 结论和展望 | 第82-84页 |
| ·结论 | 第82-83页 |
| ·展望 | 第83-84页 |
| 致谢 | 第84-85页 |
| 附录 | 第85-92页 |
