| 中文摘要 | 第1-6页 |
| Abstract | 第6-13页 |
| 第1章 绪论 | 第13-27页 |
| ·文献综述 | 第13-25页 |
| ·脊髓损伤研究进展 | 第13-19页 |
| ·人参皂苷治疗脊髓损伤方面的研究进展 | 第19-23页 |
| ·干细胞 | 第23-25页 |
| ·立项依据 | 第25-27页 |
| 第2章 大鼠脊髓损伤模型的建立 | 第27-43页 |
| ·实验材料 | 第27-29页 |
| ·实验动物 | 第27-28页 |
| ·实验药品 | 第28页 |
| ·实验器材 | 第28页 |
| ·实验用溶液配制 | 第28-29页 |
| ·实验方法 | 第29-35页 |
| ·大鼠脊髓损伤模型的建立 | 第29-30页 |
| ·手术后大鼠饲养 | 第30页 |
| ·大鼠运动功能观察 | 第30-32页 |
| ·神经电生理检查 | 第32-33页 |
| ·TUNEL 检测组织凋亡情况 | 第33-34页 |
| ·人参皂苷、胎肝干细胞治疗脊髓损伤大鼠 | 第34页 |
| ·大鼠组织获取 | 第34-35页 |
| ·数据统计分析 | 第35页 |
| ·实验结果 | 第35-39页 |
| ·实验大鼠一般情况观察 | 第35页 |
| ·脊髓损伤模型大鼠的运动能力观察 | 第35-36页 |
| ·脊髓损伤模型大鼠的脊髓标本观察 | 第36-39页 |
| ·脊髓损伤模型大鼠的脊髓神经细胞凋亡检测 | 第39页 |
| ·脊髓损伤模型大鼠的电生理检测 | 第39页 |
| ·讨论 | 第39-42页 |
| ·本章小结 | 第42-43页 |
| 第3章 胎肝干细胞诱导分化为神经样细胞 | 第43-57页 |
| ·实验材料 | 第43-47页 |
| ·干细胞来源 | 第43页 |
| ·细胞培养 | 第43-44页 |
| ·实验药品 | 第44-45页 |
| ·实验器材 | 第45页 |
| ·实验用溶液配制 | 第45-47页 |
| ·实验方法 | 第47-51页 |
| ·胎肝干细胞的分离 | 第47页 |
| ·胎肝干细胞免疫标志测定 | 第47页 |
| ·胎肝干细胞的分离、鉴定及神经样细胞的诱导分化 | 第47-48页 |
| ·细胞中总 RNA 提取 | 第48页 |
| ·RNA 浓度测定 | 第48页 |
| ·Reverse- transprition | 第48-49页 |
| ·PCR 扩增检测诱导后细胞中 nestin、NSE 和 GFAP 的表达 | 第49-50页 |
| ·免疫荧光检测诱导后细胞神经蛋白的表达 | 第50-51页 |
| ·流式细胞仪检测目的蛋白表达 | 第51页 |
| ·数据统计分析 | 第51页 |
| ·实验结果 | 第51-54页 |
| ·胎肝干细胞的分离、传代及形态学观察 | 第51页 |
| ·表面标志鉴定 | 第51-52页 |
| ·肝间充质干细胞向神经样细胞诱导分化 | 第52-54页 |
| ·讨论 | 第54-56页 |
| ·本章小结 | 第56-57页 |
| 第4章 胎肝干细胞联合人参皂苷治疗大鼠脊髓损伤的研究 | 第57-79页 |
| ·实验材料 | 第57-61页 |
| ·实验动物 | 第57-58页 |
| ·实验药品 | 第58-59页 |
| ·实验器材 | 第59-60页 |
| ·实验用溶液配制 | 第60-61页 |
| ·实验方法 | 第61-65页 |
| ·组织中总 RNA 提取 | 第61-62页 |
| ·RNA 浓度测定 | 第62页 |
| ·Reverse- transprition | 第62页 |
| ·PCR 扩增检测诱导后细胞中 nestin、NSE 和 GFAP 的表达 | 第62-63页 |
| ·组织总蛋白的提取 | 第63页 |
| ·蛋白测定 | 第63页 |
| ·SDS-PAGE 垂直电泳 | 第63-64页 |
| ·Western blot 免疫印迹 | 第64页 |
| ·蛋白表达分析 | 第64-65页 |
| ·数据统计分析 | 第65页 |
| ·实验结果 | 第65-75页 |
| ·胎肝干细胞联合人参皂苷对自噬蛋白表达情况的研究 | 第65-69页 |
| ·胎肝干细胞联合人参皂苷对凋亡蛋白表达情况的研究 | 第69-73页 |
| ·胎肝干细胞联合人参皂苷对脊髓组织内氧化应激情况的研究 | 第73-75页 |
| ·讨论 | 第75-77页 |
| ·本章小结 | 第77-79页 |
| 第5章 结论 | 第79-81页 |
| 参考文献 | 第81-95页 |
| 在学期间所取得的科研成果 | 第95-97页 |
| 致谢 | 第97页 |
