| 摘要 | 第1-6页 |
| Abstract | 第6-9页 |
| 符号说明 | 第9-10页 |
| 1 引言 | 第10-17页 |
| ·抗氧化作用与抗氧化成分 | 第10-13页 |
| ·癌症与天然抗癌成分 | 第13-15页 |
| ·皱果苋的生理活性 | 第15-17页 |
| ·研究目的及意义 | 第17页 |
| 2 材料与方法 | 第17-27页 |
| ·实验材料 | 第17-18页 |
| ·仪器与设备 | 第18-19页 |
| ·实验方法 | 第19-27页 |
| ·提取物制备 | 第19-20页 |
| ·皱果苋和血苋提取物制备 | 第19页 |
| ·皱果苋甲醇提取物的萃取 | 第19-20页 |
| ·皱果苋和血苋提取物抗氧化活性比较 | 第20-22页 |
| ·皱果苋和血苋提取物的DPPH-薄层色谱分析 | 第20页 |
| ·用分光光度法测定DPPH自由基清除活性 | 第20-21页 |
| ·DPPH-圆点印迹实验快速筛选抗氧化活性 | 第21页 |
| ·脂质过氧化抑制能力 | 第21页 |
| ·皱果苋和血苋提取物总酚含量测定 | 第21-22页 |
| ·皱果苋萃取物抗氧化活性测定 | 第22-23页 |
| ·DPPH自由基清除能力测定 | 第22页 |
| ·DPPH-圆点印迹快速比较抗氧化能力 | 第22页 |
| ·羟自由基清除能力测定 | 第22-23页 |
| ·脂质过氧化抑制能力 | 第23页 |
| ·黄嘌呤氧化酶抑制能力 | 第23页 |
| ·皱果苋乙醚萃取物的抗癌作用 | 第23-24页 |
| ·皱果苋萃取物对癌细胞的MTT分析 | 第23页 |
| ·显微镜观察皱果苋乙醚萃取物对HT-29细胞的影响 | 第23-24页 |
| ·皱果苋乙醚萃取物对癌细胞内活性氧的影响 | 第24页 |
| ·皱果苋乙醚萃取物处理对HT-29细胞相关基因的影响 | 第24页 |
| ·皱果苋乙醚萃取物对细胞周期的影响 | 第24页 |
| ·皱果苋萃取物的其它生理活性 | 第24-25页 |
| ·抗菌活性测定 | 第24-25页 |
| ·抗糖尿病活性测定 | 第25页 |
| ·皱果苋提取物的成分分析 | 第25-27页 |
| ·皱果苋提取物水溶性成分检测 | 第25-26页 |
| ·皱果苋提取物醇溶性成分检测 | 第26页 |
| ·皱果苋乙醚萃取物薄层色谱实验 | 第26页 |
| ·皱果苋乙醚萃取物紫外扫描 | 第26页 |
| ·皱果苋乙醚萃取物HPLC分析 | 第26-27页 |
| ·皱果苋乙醚萃取物GC-MC分析 | 第27页 |
| ·数据分析 | 第27页 |
| 3 结果与分析 | 第27-47页 |
| ·皱果苋和血苋提取物的抗氧化活性 | 第27-32页 |
| ·提取物得率 | 第27-28页 |
| ·提取物DPPH-圆点印迹法分析 | 第28页 |
| ·提取物DPPH自由基清除能力 | 第28-30页 |
| ·提取物DPPH-薄层色谱(TCL)分析 | 第30-31页 |
| ·提取物脂质过氧化抑制能力 | 第31页 |
| ·提取物总酚含量测定 | 第31-32页 |
| ·皱果苋萃取物抗氧化活性测定 | 第32-36页 |
| ·萃取物各部分得率 | 第32-33页 |
| ·萃取物的DPPH-圆点印迹法分析 | 第33页 |
| ·萃取物DPPH自由基清除能力 | 第33-34页 |
| ·萃取物脂质过氧化抑制能力 | 第34-35页 |
| ·萃取物羟自由基清除能力 | 第35页 |
| ·萃取物黄嘌呤氧化酶(XO)抑制能力 | 第35-36页 |
| ·皱果苋乙醚萃取物对HT-29细胞抗癌活性测定 | 第36-41页 |
| ·细胞凋亡 | 第36-37页 |
| ·显微镜观察细胞数量变化 | 第37-38页 |
| ·诱导活性氧变化 | 第38-39页 |
| ·相关基因表达影响 | 第39-40页 |
| ·皱果苋对HT-29细胞周期的影响 | 第40-41页 |
| ·皱果苋萃取物其它生理活性 | 第41-43页 |
| ·抗菌作用 | 第41-42页 |
| ·抗糖尿病作用 | 第42-43页 |
| ·皱果苋化学成分分离鉴定 | 第43-47页 |
| ·提取物化学成分定性检测 | 第43-44页 |
| ·皱果苋乙醚萃取物成分分析 | 第44-47页 |
| 4 讨论 | 第47-49页 |
| 5 结论 | 第49-50页 |
| 参考文献 | 第50-55页 |
| 附录 | 第55-57页 |
| 致谢 | 第57-58页 |