| 摘要 | 第1-7页 |
| Abstract | 第7-18页 |
| 第一章 文献综述 | 第18-35页 |
| 1 真菌多糖免疫调节作用及机制研究进展 | 第18-26页 |
| ·促进免疫器官发育 | 第18-19页 |
| ·促进体液免疫功能 | 第19-20页 |
| ·增强T细胞免疫功能 | 第20-21页 |
| ·增强单核吞噬细胞功能 | 第21-22页 |
| ·提高红细胞免疫功能 | 第22页 |
| ·促进细胞因子产生 | 第22-23页 |
| ·影响淋巴细胞信号转导 | 第23-25页 |
| ·影响淋巴细胞钙离子转导 | 第23-24页 |
| ·调节cAMP、cGMP活性 | 第24-25页 |
| ·调节巨噬细胞的一氧化氮含量 | 第25页 |
| ·真菌多糖作为免疫增强剂应用前景展望 | 第25-26页 |
| 2 兽用免疫增强剂研究进展 | 第26-31页 |
| ·免疫增强剂分类 | 第26-27页 |
| ·新型兽用免疫佐剂 | 第27-30页 |
| ·免疫刺激复合物佐剂 | 第27页 |
| ·脂质体佐剂 | 第27-28页 |
| ·细胞因子类佐剂 | 第28-29页 |
| ·胞嘧啶-鸟嘌呤寡脱氧核苷酸佐剂 | 第29页 |
| ·天然产物佐剂 | 第29-30页 |
| ·免疫增强剂存在的问题及展望 | 第30-31页 |
| 3 鸡枞菌研究进展 | 第31-33页 |
| ·鸡枞菌生态特点与分布 | 第31页 |
| ·鸡枞菌分类和形态学鉴定 | 第31-32页 |
| ·鸡枞菌生物学活性物质研究 | 第32-33页 |
| ·鸡枞菌的开发前景 | 第33页 |
| 4 选题依据和意义 | 第33-35页 |
| 第二章 鸡枞菌多糖分离纯化工艺研究 | 第35-45页 |
| 1 试验材料 | 第35页 |
| ·主要药品与试剂 | 第35页 |
| ·主要仪器 | 第35页 |
| 2 方法 | 第35-38页 |
| ·鸡枞菌粗多糖提取工艺的单因素研究 | 第35-36页 |
| ·温度对粗多糖得率的影响 | 第35-36页 |
| ·液料比对粗多糖得率的影响 | 第36页 |
| ·提取时间对粗多糖得率的影响 | 第36页 |
| ·提取次数对粗多糖得率的影响 | 第36页 |
| ·鸡枞菌粗多糖的提取工艺正交试验 | 第36页 |
| ·超声波法与热水浸提法的粗多糖提取率比较试验 | 第36-37页 |
| ·试验用精制多糖制备 | 第37-38页 |
| ·冻融法除蛋白 | 第37页 |
| ·Sevage法除蛋白 | 第37页 |
| ·H_2O_2脱色 | 第37页 |
| ·透析法去除小分子杂质 | 第37页 |
| ·多糖定性试验 | 第37页 |
| ·鸡枞菌多糖的糖含量测定 | 第37-38页 |
| 3 结果 | 第38-42页 |
| ·单因素对粗多糖含量的影响 | 第38-39页 |
| ·粗多糖提取工艺参数的正交试验结果 | 第39-40页 |
| ·超声波法与热水浸提法提取粗多糖效果比较 | 第40-41页 |
| ·精制多糖制备 | 第41-42页 |
| ·定性试验 | 第41页 |
| ·糖含量测定 | 第41-42页 |
| 4 讨论与小结 | 第42-45页 |
| ·多糖提取工艺优化 | 第42-43页 |
| ·多糖纯化工艺 | 第43-44页 |
| ·小结 | 第44-45页 |
| 第三章 鸡枞菌多糖对小鼠脾淋巴细胞免疫功能的影响 | 第45-63页 |
| 1 试验材料 | 第45-46页 |
| ·主要药品与试剂 | 第45页 |
| ·试验动物 | 第45页 |
| ·主要仪器 | 第45-46页 |
| 2 方法 | 第46-48页 |
| ·鸡枞菌多糖对小鼠脾淋巴细胞增殖的影响 | 第46页 |
| ·脾淋巴细胞分离 | 第46页 |
| ·TAP对小鼠脾淋巴细胞增殖的影响 | 第46页 |
| ·不同时间TAP对脾淋巴细胞分泌IL-2、IL-4、IFN-Γ的影响 | 第46-47页 |
| ·TAP对脾淋巴细胞分泌IL-2、IL-4、IFN-γ的影响 | 第46页 |
| ·TAP协同ConA对脾淋巴细胞分泌IL-2、IL-4、IFN-γ的影响 | 第46-47页 |
| ·TAP对体外培养小鼠T淋巴细胞CD3~+%及CD4~+/CD8~+的影响 | 第47页 |
| ·TAP对脾淋巴细胞IL-4、IL-2、IFN-r MRNA表达的影响 | 第47-48页 |
| ·脾淋巴细胞总mRNA提取 | 第47页 |
| ·半定量RT-PCR法检测IL-4、IL-2、IFN-γ mRNA表达 | 第47-48页 |
| ·数据分析 | 第48页 |
| 3 结果 | 第48-60页 |
| ·TAP对脾淋巴细胞增殖的影响 | 第48-49页 |
| ·TAP对脾淋巴细胞分泌IL-4、IFN-r、IL-2的影响 | 第49-54页 |
| ·TAP单独使用时对脾淋巴细胞分泌IL-4、IFN-γγ、IL-2的影响 | 第49-52页 |
| ·TAP协同ConA对脾淋巴细胞分泌IL-4、IFN-γ、IL-2的影响 | 第52-54页 |
| ·TAP协同CONA对体外培养T淋巴细胞亚群的影响 | 第54-56页 |
| ·体外培养脾淋巴细胞总RNA提取 | 第56页 |
| ·TAP对体外培养淋巴细胞IL-4、IFN-Γ、IL-2 MRNA表达的影响 | 第56-60页 |
| 4 讨论与小结 | 第60-63页 |
| ·TAP对脾淋巴细胞增殖的影响 | 第60页 |
| ·TAP对T淋巴细胞分类的影响 | 第60-61页 |
| ·TAP对细胞因子及其MRNA表达的影响 | 第61-62页 |
| ·小结 | 第62-63页 |
| 第四章 鸡枞菌多糖在体内对小鼠免疫功能的影响 | 第63-80页 |
| 1 试验材料 | 第63-64页 |
| ·主要药品与试剂 | 第63-64页 |
| ·主要仪器 | 第64页 |
| ·试验动物 | 第64页 |
| 2 方法 | 第64-66页 |
| ·鸡枞菌多糖(TAP)对正常小鼠免疫功能的影响 | 第64-65页 |
| ·TAP对正常小鼠溶血素及免疫器官指数的影响 | 第64-65页 |
| ·TAP对正常小鼠巨噬细胞功能的影响 | 第65页 |
| ·TAP对免疫抑制小鼠免疫功能的影响 | 第65-66页 |
| ·小鼠免疫抑制模型制备 | 第65页 |
| ·腹腔巨噬细胞功能及免疫器官指数检测 | 第65页 |
| ·外周血CD3~+、CD4~+和CD8~+T淋巴细胞亚群检测 | 第65页 |
| ·外周血溶血素及细胞因子IL-2,IL-4和IFN-γγ含量检测 | 第65-66页 |
| ·脾淋巴细胞增殖试验 | 第66页 |
| ·TAP对脾脏和胸腺组织病理学变化的影响 | 第66页 |
| ·数据统计分析 | 第66页 |
| 3 结果 | 第66-76页 |
| ·TAP对正常小鼠免疫功能的影响 | 第66-68页 |
| ·TAP对溶血素及免疫器官指数的影响 | 第66-67页 |
| ·TAP对正常小鼠腹腔巨噬细胞吞噬功能的影响 | 第67-68页 |
| ·TAP对免疫抑制小鼠免疫功能的影响 | 第68-76页 |
| ·TAP对腹腔巨噬细胞功能和免疫器官指数的影响 | 第68-69页 |
| ·鸡枞菌多糖对免疫抑制小鼠T淋巴细胞亚群的影响 | 第69-71页 |
| ·TAP对免疫抑制小鼠血清溶血素和细胞因子的影响 | 第71-72页 |
| ·鸡枞菌多糖对免疫抑制小鼠脾淋巴细胞的增殖的影响 | 第72-73页 |
| ·TAP对免疫抑制小鼠脾脏和胸腺组织病理学变化的影响 | 第73-76页 |
| 4 讨论与小结 | 第76-80页 |
| ·免疫抑制模型制作 | 第76页 |
| ·TAP对小鼠腹腔巨噬细胞功能的影响 | 第76-77页 |
| ·TAP对小鼠血清溶血素的影响 | 第77页 |
| ·TAP对小鼠免疫器官的影响 | 第77页 |
| ·TAP对免疫抑制小鼠淋巴细胞增殖的影响 | 第77-78页 |
| ·TAP对免疫抑制小鼠淋巴细胞分类及细胞因子的影响 | 第78-79页 |
| ·小结 | 第79-80页 |
| 第五章 鸡枞菌多糖注射液的制备、质量控制及稳定性试验 | 第80-90页 |
| 1 试验材料 | 第80页 |
| ·主要药品与试剂 | 第80页 |
| ·主要仪器 | 第80页 |
| ·试验动物 | 第80页 |
| 2 方法 | 第80-82页 |
| ·TAP注射液的制备 | 第80页 |
| ·质量检查 | 第80-82页 |
| ·鞣质检查 | 第80页 |
| ·pH值检查 | 第80-81页 |
| ·无菌检查 | 第81页 |
| ·热原试验 | 第81页 |
| ·澄明度检查 | 第81页 |
| ·TAP注射液含糖量测定 | 第81-82页 |
| ·费林试剂法测定TAP注射液单糖含量 | 第82页 |
| ·稳定性试验 | 第82页 |
| ·强光对TAP注射液的影响 | 第82页 |
| ·高温对TAP注射液产品的影响 | 第82页 |
| ·经典恒温法初步估算TAP注射液有效期 | 第82页 |
| 3 结果 | 第82-87页 |
| ·TAP质量检查 | 第82-84页 |
| ·鞣质检查 | 第82-83页 |
| ·pH值检查 | 第83页 |
| ·无菌检查 | 第83页 |
| ·热原实验 | 第83-84页 |
| ·澄明度检测 | 第84页 |
| ·TAP注射液含糖量和单糖含量测定结果 | 第84页 |
| ·稳定性试验 | 第84-87页 |
| ·强光对TAP注射液的影响 | 第84-85页 |
| ·高温对TAP注射液的影响 | 第85页 |
| ·加速试验结果 | 第85-87页 |
| 4 讨论与小结 | 第87-90页 |
| ·TAP注射液的制备工艺 | 第87页 |
| ·TAP注射液的质量控制 | 第87-88页 |
| ·TAP注射液有效期 | 第88-89页 |
| ·小结 | 第89-90页 |
| 第六章 鸡枞菌多糖注射液安全性试验 | 第90-98页 |
| 1 试验材料 | 第90页 |
| ·主要药品 | 第90页 |
| ·试验动物 | 第90页 |
| ·主要仪器 | 第90页 |
| 2 方法 | 第90-93页 |
| ·急性毒性试验 | 第90-91页 |
| ·亚慢性毒性试验 | 第91页 |
| ·局部刺激试验 | 第91-92页 |
| ·眼部刺激试验 | 第91页 |
| ·肌肉刺激试验 | 第91-92页 |
| ·过敏反应试验 | 第92页 |
| ·溶血试验 | 第92-93页 |
| 3 结果 | 第93-96页 |
| ·急性毒性试验 | 第93页 |
| ·亚慢性毒性试验 | 第93-95页 |
| ·局部刺激试验结果 | 第95页 |
| ·眼部刺激试验结果 | 第95页 |
| ·肌肉刺激试验结果 | 第95页 |
| ·过敏试验结果 | 第95页 |
| ·溶血试验结果 | 第95-96页 |
| 4. 讨论与小结 | 第96-98页 |
| ·急、亚慢性毒性试验 | 第96页 |
| ·局部刺激试验 | 第96页 |
| ·过敏试验 | 第96-97页 |
| ·溶血试验 | 第97页 |
| ·小结 | 第97-98页 |
| 第七章 鸡枞菌多糖作为免疫佐剂对疫苗免疫效果的影响 | 第98-111页 |
| 1 试验材料 | 第98页 |
| ·主要药品与试剂 | 第98页 |
| ·主要仪器 | 第98页 |
| ·试验动物 | 第98页 |
| 2 方法 | 第98-101页 |
| ·TAP对猪口蹄疫灭活苗免疫效果的影响 | 第99页 |
| ·动物分组与处理 | 第99页 |
| ·正向间接血凝试验检测口蹄疫抗体效价 | 第99页 |
| ·TAP对免疫仔猪外周血白细胞的影响 | 第99页 |
| ·TAP对鸡新城疫弱毒苗免疫效果的影响 | 第99-101页 |
| ·动物分组与处理 | 第100页 |
| ·1%鸡红细胞悬液制备 | 第100页 |
| ·血凝(HA)试验测定抗原效价 | 第100页 |
| ·4单位凝集价抗原校正 | 第100-101页 |
| ·血凝抑制(HI)试验检测新城疫抗体效价 | 第101页 |
| ·免疫器官指数检测 | 第101页 |
| ·数据分析 | 第101页 |
| 3 结果 | 第101-106页 |
| ·TAP对口蹄疫油佐剂灭活苗免疫效果的影响 | 第101-103页 |
| ·TAP对免疫仔猪外周血白细胞的影响 | 第103-105页 |
| ·TAP对鸡新城疫弱毒苗免疫效果的影响 | 第105-106页 |
| ·TAP对鸡免疫器官指数的影响 | 第106页 |
| 4 讨论与小结 | 第106-111页 |
| ·TAP对灭活苗和弱毒苗免疫后抗体效价的影响 | 第106-108页 |
| ·TAP对免疫仔猪血液生理指标的影响 | 第108-109页 |
| ·TAP对免疫鸡体重及免疫器官的影响 | 第109页 |
| ·小结 | 第109-111页 |
| 参考文献 | 第111-124页 |
| 致谢 | 第124-125页 |
| 攻读学位期间发表论文 | 第125页 |
