灰树花胞外多糖的液体发酵及其硫酸酯的制备
| 摘要 | 第1-5页 |
| Abstract | 第5-9页 |
| 1 前言 | 第9-27页 |
| ·真菌多糖 | 第9-11页 |
| ·真菌多糖简介 | 第9-10页 |
| ·真菌多糖的生物活性 | 第10-11页 |
| ·灰树花 | 第11-18页 |
| ·灰树花分类 | 第11-12页 |
| ·灰树花的分布 | 第12页 |
| ·灰树花的形态特征 | 第12-13页 |
| ·灰树花的营养成分 | 第13-14页 |
| ·灰树花的人工培养 | 第14-18页 |
| ·灰树花多糖 | 第18-23页 |
| ·灰树花多糖简介 | 第18页 |
| ·灰树花多糖的生物活性 | 第18-23页 |
| ·硫酸酯化多糖 | 第23-24页 |
| ·国内外食药用真菌发展动态 | 第24-25页 |
| ·本课题的研究内容及意义 | 第25-27页 |
| 2 材料与方法 | 第27-36页 |
| ·实验材料 | 第27-29页 |
| ·菌种 | 第27页 |
| ·主要药品及试剂 | 第27-28页 |
| ·主要仪器及设备 | 第28-29页 |
| ·培养基 | 第29页 |
| ·实验方法 | 第29-36页 |
| ·菌种活花 | 第29页 |
| ·菌种培养 | 第29页 |
| ·种子液的制备 | 第29页 |
| ·种子生长曲线及种龄的测定 | 第29-30页 |
| ·灰树花菌丝体干重的测定 | 第30页 |
| ·发酵液的制备 | 第30页 |
| ·发酵液中EPS的测定 | 第30页 |
| ·不同因素对灰树花菌丝体生长及EPS产量的影响 | 第30-31页 |
| ·5L生物反应器中灰树花产EPS发酵条件的优化 | 第31页 |
| ·灰树花EPS分离工艺的研究 | 第31页 |
| ·灰树花EPS提取工艺正交实验优化 | 第31-32页 |
| ·蛋白质去除工艺优化 | 第32-33页 |
| ·EPS结构分析 | 第33-34页 |
| ·硫酸酯化法对灰树花EPS水溶性的改善 | 第34-36页 |
| 3 结果与讨论 | 第36-56页 |
| ·种子生长曲线及种龄的测定 | 第36-37页 |
| ·苯酚—硫酸法标准曲线的建立 | 第37页 |
| ·不同因素对灰树花菌丝生长及EPS产量的影响 | 第37-39页 |
| ·灰树花发酵培养基的正交优化 | 第37-38页 |
| ·植物油及表面活性制的影响 | 第38-39页 |
| ·生长因子浓度的影响 | 第39页 |
| ·灰树花EPS 5L生物反应器发酵条件优化 | 第39-43页 |
| ·发酵罐搅拌装置改进 | 第39-40页 |
| ·转速对灰树花EPS产量的影响 | 第40-42页 |
| ·pH对灰树花EPS产量的影响 | 第42-43页 |
| ·灰树花EPS提取工艺实验优化 | 第43-46页 |
| ·EPS除蛋白工艺优化 | 第43-44页 |
| ·醇沉工艺优化 | 第44-46页 |
| ·紫外全波长扫描法对灰树花胞外多糖扫描 | 第46页 |
| ·EPS结构分析 | 第46-51页 |
| ·EPS的薄层色谱(TLC)分析 | 第46-47页 |
| ·傅立叶红外光谱(FT-IR)分析官能团 | 第47-48页 |
| ·气相色谱(GC)分析单糖组成 | 第48-49页 |
| ·原子力显微镜(AFM)观察EPS的结构形貌 | 第49-51页 |
| ·硫酸酯化法对灰树花多糖水溶性改善单因素试验 | 第51-56页 |
| ·硫酸钡比浊法标准曲线 | 第51-52页 |
| ·吡啶-氯磺酸比例对多糖酯化反应DS的影响 | 第52页 |
| ·温度对多糖酯化反应DS的影响 | 第52-53页 |
| ·反应时间对多糖酯化反应DS的影响 | 第53页 |
| ·红外光谱法对硫酸酯化多糖官能团测定 | 第53-54页 |
| ·紫外全波长扫描法对硫酸酯化多糖管能团的测定 | 第54-56页 |
| 4 结论 | 第56-57页 |
| 5 展望 | 第57-58页 |
| 6 参考文献 | 第58-66页 |
| 7 攻读硕士学位期间发表论文情况 | 第66-67页 |
| 8 致谢 | 第67页 |
