| 摘要 | 第1-9页 |
| Abstract | 第9-12页 |
| 前言 | 第12-18页 |
| 第一章 | 第18-34页 |
| 1 材料 | 第18-20页 |
| ·研究对象 | 第18页 |
| ·胃癌及癌前病变患者信息 | 第18-19页 |
| ·样本采集 | 第19页 |
| ·实验设备 | 第19-20页 |
| 2 方法 | 第20-21页 |
| ·血标本的预处理 | 第20页 |
| ·血浆代谢物提取 | 第20页 |
| ·GC/TOFMS分析条件、数据采集和处理 | 第20-21页 |
| ·数据统计分析 | 第21页 |
| 3 结果 | 第21-28页 |
| 4 讨论 | 第28-33页 |
| ·建立模型 | 第29-30页 |
| ·鸟氨酸循环 | 第30-32页 |
| ·能量代谢异常 | 第32-33页 |
| 5 小结 | 第33-34页 |
| 第二章 | 第34-57页 |
| 1 材料 | 第34-35页 |
| ·研究对象 | 第34页 |
| ·胃癌组织与血浆患者信息 | 第34页 |
| ·样本采集 | 第34-35页 |
| ·实验试剂 | 第35页 |
| ·实验设备 | 第35页 |
| 2 方法 | 第35-37页 |
| ·血标本的预处理 | 第35-36页 |
| ·血浆代谢物提取 | 第36页 |
| ·GC/TOFMS分析条件、数据采集和处理 | 第36-37页 |
| ·数据统计分析 | 第37页 |
| 3 结果 | 第37-52页 |
| ·胃癌组织的GC/TOFMS数据的PLS-DA分析 | 第40页 |
| ·胃癌血浆的GC/TOFMS数据的PLS-DA分析 | 第40-52页 |
| 4 讨论 | 第52-56页 |
| ·糖酵解和三羧酸循环 | 第53-54页 |
| ·氨基酸和核苷酸代谢 | 第54-55页 |
| ·脂类代谢 | 第55-56页 |
| 5 小结 | 第56-57页 |
| 第三章 | 第57-95页 |
| 1 材料 | 第57-59页 |
| ·研究对象 | 第57页 |
| ·食管癌患者信息 | 第57页 |
| ·样本收集 | 第57页 |
| ·细胞株来源 | 第57-58页 |
| ·实验设备 | 第58-59页 |
| 2 实验方法 | 第59-66页 |
| ·血标本处理 | 第59页 |
| ·血浆代谢物提取 | 第59页 |
| ·组织代谢物提取 | 第59页 |
| ·实验试剂及配制方法 | 第59-61页 |
| ·Ecal109细胞的常规培 | 第61-64页 |
| ·流式细胞仪分析 | 第64页 |
| ·代谢组学分析小分子代谢产物 | 第64-65页 |
| ·GC/TOFMS分析条件、数据采集和处理 | 第65页 |
| ·数据统计分析 | 第65-66页 |
| 3 结果 | 第66-91页 |
| ·食管癌患者与正常人血清小分子代谢物的差异 | 第66-73页 |
| ·食管癌患者癌组织和癌旁组织小分子代谢物的差异 | 第73-78页 |
| ·2-DG对Ecal109细胞增殖活性的影响 | 第78-80页 |
| ·2-DG对Ecal109细胞周期及细胞凋亡的影响 | 第80-86页 |
| ·2-DG作用后Ecal109细胞的代谢表型变化 | 第86页 |
| ·Ecal109细胞的GC/TOFMS数据的PLS-DA分析 | 第86-91页 |
| 4 讨论 | 第91-94页 |
| 5 小结 | 第94-95页 |
| 参考文献 | 第95-100页 |
| 文献综述 | 第100-123页 |
| 代谢组学在直肠癌的研究进展 | 第100-114页 |
| 参考文献 | 第109-114页 |
| 代谢组学在肿瘤临床研究中的应用及进 | 第114-123页 |
| 参考文献 | 第120-123页 |
| 攻读博士期间发表文章情况 | 第123-125页 |
| 致谢 | 第125页 |
