| 摘要 | 第1-6页 |
| Abstract | 第6-11页 |
| 第1章 文献综述 | 第11-27页 |
| ·过氧化物酶 | 第11-22页 |
| ·植物 POD的类型划分和组织定位 | 第11-12页 |
| ·POD分子结构特点 | 第12-14页 |
| ·POD的分离、纯化和鉴定 | 第14-15页 |
| ·POD酶蛋白基因表达与调控的分子生物学 | 第15-17页 |
| ·酶的生理功能及其与环境胁迫的关系 | 第17-22页 |
| ·银杏 | 第22-25页 |
| ·银杏进化地位的研究 | 第23-24页 |
| ·银杏叶的活性成分及其利用价值 | 第24-25页 |
| ·有关银杏叶过氧化物酶的研究 | 第25-26页 |
| ·本研究目的及意义 | 第26-27页 |
| 第2章 银杏叶 POD表观酶活性质及海藻糖对其活性的影响 | 第27-36页 |
| ·引言 | 第27页 |
| ·材料和方法 | 第27-29页 |
| ·材料来源 | 第27页 |
| ·主要化学试剂 | 第27-29页 |
| ·主要仪器 | 第29页 |
| ·主要实验方法 | 第29-30页 |
| ·样品处理 | 第29页 |
| ·酶活力测定方法 | 第29页 |
| ·银杏叶POD热稳定性测定及海藻糖的影响 | 第29-30页 |
| ·银杏叶POD最适pH测定及海藻糖的影响 | 第30页 |
| ·数据分析 | 第30页 |
| ·结果与分析 | 第30-34页 |
| ·银杏叶表观热稳定性及最适pH | 第30-31页 |
| ·海藻糖对银杏叶热稳定性的影响 | 第31-32页 |
| ·海藻糖对银杏叶最适pH的影响 | 第32-34页 |
| ·讨论 | 第34-36页 |
| 第3章 银杏叶POD的分离纯化 | 第36-52页 |
| ·引言 | 第36页 |
| ·技术路线 | 第36-37页 |
| ·仪器及耗材 | 第37-38页 |
| ·材料来源 | 第37页 |
| ·主要化学试剂 | 第37-38页 |
| ·主要仪器 | 第38页 |
| ·主要实验方法 | 第38-41页 |
| ·酶活力的测定方法 | 第38页 |
| ·蛋白浓度的测定 | 第38-39页 |
| ·聚丙烯酰铵凝胶电泳方法 | 第39页 |
| ·粗酶液的提取 | 第39页 |
| ·硫酸铵分级沉淀 | 第39-40页 |
| ·Sephadex G-100柱层析 | 第40页 |
| ·DEAE-A52阴离子交换层析 | 第40-41页 |
| ·冰冻干燥 | 第41页 |
| ·纯化倍数和回收率的测定 | 第41页 |
| ·结果与分析 | 第41-50页 |
| ·粗酶液提取 | 第41-42页 |
| ·硫酸铵分级沉淀 | 第42-43页 |
| ·Sephadex G-100柱层析 | 第43-46页 |
| ·DEAE-A52阴离子交换层析 | 第46-50页 |
| ·纯化倍数及回收率的计算 | 第50页 |
| ·讨论 | 第50-52页 |
| 第4章 银杏叶 POD酶学性质研究 | 第52-59页 |
| ·引言 | 第52页 |
| ·材料 | 第52页 |
| ·材料来源 | 第52页 |
| ·主要试剂 | 第52页 |
| ·主要仪器 | 第52页 |
| ·主要实验方法 | 第52-53页 |
| ·POD酶活力测定 | 第52页 |
| ·最适pH值 | 第52-53页 |
| ·最适温度及热稳定性测定 | 第53页 |
| ·海藻糖对 POD最适pH值及热稳定性的影响 | 第53页 |
| ·其它化合物对 POD活性的影响 | 第53页 |
| ·结果与分析 | 第53-57页 |
| ·最适pH值的确定 | 第53-54页 |
| ·最适温度及热稳定性测定 | 第54-55页 |
| ·海藻糖对 POD最适pH值及热稳定性的影响 | 第55-56页 |
| ·其它几种化合物对 POD活性的影响 | 第56-57页 |
| ·讨论 | 第57-59页 |
| 结束语 | 第59-60页 |
| 作者简介 | 第60-61页 |
| 参考文献 | 第61-68页 |
| 致谢 | 第68页 |